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文檔簡(jiǎn)介
ICS07.080
A20/39
中華人民共和國(guó)國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)
GB/T╳╳╳╳-201╳
瓊脂糖分離介質(zhì)
Agarose-basedchromatographicmedium
(征求意見(jiàn)稿)
200×-××-××發(fā)布200×-××-××實(shí)施
中華人民共和國(guó)國(guó)家質(zhì)量監(jiān)督檢驗(yàn)檢疫總局
中國(guó)國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)化管理委員會(huì)
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瓊脂糖分離介質(zhì)
1范圍
本標(biāo)準(zhǔn)規(guī)定了瓊脂糖分離介質(zhì)的技術(shù)要求、檢測(cè)方法、檢驗(yàn)規(guī)則、標(biāo)志、包裝、運(yùn)輸和
貯存。
本標(biāo)準(zhǔn)適用于骨架為瓊脂糖微球的分離介質(zhì)的生產(chǎn)與檢測(cè)。
2規(guī)范性引用文件
下列文件對(duì)于本文件的應(yīng)用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,僅所注日期的版本
適用于本文件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改單)適用于本文件。
GB/T601化學(xué)試劑標(biāo)準(zhǔn)滴定溶液的制備
GB/T603化學(xué)試劑試驗(yàn)方法中所用制劑及制品的制備
3術(shù)語(yǔ)與定義
下列術(shù)語(yǔ)和定義適用于本文件。
3.1瓊脂糖分離介質(zhì)agarose-basedchromatographicmedium
瓊脂糖分離介質(zhì)是以瓊脂糖為主要原料制備得到的一類層析介質(zhì)。
4技術(shù)要求
4.1外觀
在光學(xué)顯微鏡下球形飽滿,表面光滑,透明性良好。
4.2理化性質(zhì)
瓊脂糖分離介質(zhì)的理化性質(zhì)應(yīng)符合表1中的規(guī)定。
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表1瓊脂糖分離介質(zhì)技術(shù)要求
技術(shù)指標(biāo)
檢驗(yàn)項(xiàng)目
4%瓊脂糖分離介質(zhì)6%瓊脂糖分離介質(zhì)FF
粒度范圍/(45~165μm)(24~44μm)(45~165μm)(24~44μm)
%≥90≥90≥90≥90
平均粒徑(μm)97.5±12.534.00±695.5±14.535.5±11.5
在0.1Mpa壓力下可達(dá)最高流
≥210≥60≥270≥60
速*(cm/h)
固含量(%)7.50±1.6010.50±2.00
Mp=200000.59-0.660.61-0.680.48-0.530.54-0.59
分配系數(shù)Kav
Mp=500000.64-0.710.66-0.730.69-0.770.75-0.83
(葡聚糖)
Mp=100000.79-0.880.79-0.870.72-0.800.77-0.85
非特異性吸附
≤18≤18≤18≤18
(μg細(xì)胞色素C/mL介質(zhì))
微生物污染
<100<100
(菌落數(shù)/mL懸浮液)
化學(xué)穩(wěn)定性pH3.0≤0.21≤0.21≤0.35≤0.35
(脫落物羥甲
基糠醛測(cè)pH13.0≤0.17≤0.17≤0.17≤0.17
定,%)
*:層析柱Φ1.60cm×20.00cm(介質(zhì)床層高度10.00cm),溫度22℃(±3℃),溶液為H2O的
條件下測(cè)定。
5試驗(yàn)方法
本方法中所用的水,在未注明其他要求時(shí),應(yīng)符合GB/T6682中二級(jí)水的規(guī)格,所用試
劑,在未注明其他規(guī)格時(shí),均指分析純(AR)。
5.1外觀
5.1.1儀器
5.1.1.1光學(xué)顯微鏡。
5.1.1.2真空泵:極限真空0.1MPa。
5.1.2測(cè)定步驟
5.1.2.1樣品處理
4
用量筒量取5mL瓊脂糖白球,置于50mL砂芯漏斗中。用三級(jí)水清洗5次每次2min,
抽干5min。將洗凈的瓊脂糖白球置于燒杯中,瓊脂糖白球上應(yīng)有2cm的三級(jí)水。混勻后得
到瓊脂糖白球與水的混合體系。
5.1.2.2樣品觀測(cè)前處理
用塑料吸管吸取1mL瓊脂糖白球與水的混合體系置于載玻片上,調(diào)整顯微鏡放大倍數(shù)。
以視野里80%以上面積均為白球?yàn)闃?biāo)準(zhǔn),用塑料吸管增減載玻片上的微球,最后用蓋玻片
壓上。
5.1.2.3樣品觀測(cè)
調(diào)節(jié)光學(xué)顯微鏡焦距,使視野中的影像清晰。拍攝瓊脂糖白球照片并保存。
5.2粒徑及其分布
5.2.1儀器
5.2.2.1激光粒度儀。
5.2.2.2塑料吸管。
5.2.2.3玻璃濾瓶。
5.2.2.4砂芯漏斗(G3)。
5.2.2.5真空泵:極限真空0.10MPa。
5.2.2測(cè)定步驟
5.2.2.1樣品處理
方法同5.1.3.1。
5.2.2.2樣品檢測(cè)
設(shè)置測(cè)量顆粒類型為通用型,分散劑類型為水,分析模式為單峰模式,添加樣品進(jìn)行測(cè)
定。
5.2.4結(jié)果表示
通過(guò)激光粒度儀的檢測(cè)結(jié)果包括平均粒徑值及其分布圖,根據(jù)粒徑分布(如圖1中表格)
按公式(1)計(jì)算45-165μm粒徑范圍內(nèi)微球數(shù)量所占百分比。
5
……(1)
式中:
W粒徑——45-165μm粒徑范圍內(nèi)微球數(shù)量所占百分比,單位是%;
W1,W2,……Wx——符合45-165μm范圍的各粒徑范圍百分比,例如圖1中45.709
μm-52.481μm的球所占百分比為5.35%。
圖1瓊脂糖分離介質(zhì)粒徑分布圖
平均粒徑的計(jì)算方法:
其中dBk為單個(gè)介質(zhì)的粒徑,為所統(tǒng)計(jì)的一定數(shù)量介質(zhì)顆粒的平均值,N為
所統(tǒng)計(jì)的介質(zhì)顆粒的數(shù)目。
5.2.5允許差
同一試樣三次測(cè)定結(jié)果之差,應(yīng)不超過(guò)平均值的5%。
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5.3耐受壓力強(qiáng)度測(cè)試
5.3.2儀器
5.3.2.1中低壓層析系統(tǒng)。
5.3.2.2玻璃層析柱:Φ1.60cm×20.00cm。
5.3.2.3玻璃濾瓶。
5.3.2.4砂芯漏斗(G3)。
5.3.2.5真空泵:極限真空0.10MPa。
5.3.3測(cè)定步驟
5.3.3.1樣品處理
方法同5.1.3.1。
5.3.3.2樣品裝柱
將介質(zhì)與水的混合漿液倒入層析柱中,堵住柱子出口,靜置,待柱床層穩(wěn)定(Φ1.60
cm×10.00cm),柱子上端充滿水。打開(kāi)柱子入口,連續(xù)向柱中通入三級(jí)水(10個(gè)柱體積),
保持床層穩(wěn)定。
5.3.3.3樣品測(cè)定
將層析柱連入中低壓層析系統(tǒng)。測(cè)定時(shí),從零開(kāi)始設(shè)定一定流速Vx(mL/min),保持
該流速5min后,記錄此時(shí)柱壓Px(MPa)。繼續(xù)增加流速,并測(cè)定相應(yīng)流速下的柱壓。直到
壓力達(dá)到0.10Mpa為止。
5.3.4結(jié)果表示
按公式(3)計(jì)算線速度。以線速度(V)與壓力(Px)之間的關(guān)系作圖,由圖讀取最
大流速(如圖2)。
…………(3)
式中:
V——線速度(cm/h);
Vx——流速(mL/min);
S——層析柱截面積(cm2)。
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圖2瓊脂糖分離介質(zhì)壓力-流速曲線
5.3.5允許差
同一試樣三次測(cè)定結(jié)果之差,應(yīng)不超過(guò)平均值的10%。
5.4固含量
5.4.1儀器
5.4.2.1分析天平:精度0.1mg。
5.4.2.2離心機(jī):0–4000r/min(可調(diào));50mL玻璃離心管(底部帶有G3砂芯篩板)4
支。
5.4.2.3玻璃濾瓶。
5.4.2.4砂芯漏斗(G3)。
5.4.2.5架盤天平:精度0.1g。
5.4.2.6稱量瓶:Φ50mm×30mm。
5.4.2.7干燥器:Φ250mm,內(nèi)放硅膠干燥劑。
5.4.2.8烘箱:溫度波動(dòng)±2℃。
5.4.2.9真空泵:極限真空0.10MPa。
5.4.3測(cè)定步驟
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5.4.3.1樣品處理
方法同5.1.3.1。
5.4.3.2樣品稱量
將5mL瓊脂糖分離介質(zhì)與水的混合體系裝入離心管內(nèi),置于離心機(jī),在2000r/min下
離心5min。取出離心管,將樣品小心倒入稱量瓶?jī)?nèi),蓋嚴(yán)。在已恒重的兩個(gè)稱量瓶中分別
稱入上述稱重白球樣品(1.0-1.5g),精確至0.1mg。
5.4.3.3樣品烘干稱量
將稱量瓶開(kāi)蓋置于烘箱中,于105±2℃干燥4h至恒重。將稱量瓶蓋嚴(yán),取出置于干燥
器內(nèi),冷卻30min至室溫,稱量。
5.4.4結(jié)果表示
瓊脂糖分離介質(zhì)固含量按公式(4)計(jì)算:
G-G
W=2′100………………(4)
G1-G
式中:
W——固含量(%);
G1——干燥前稱量瓶加試樣質(zhì)量(g);
G2——干燥后稱量瓶加試樣質(zhì)量(g);
G——稱量瓶質(zhì)量(g)。
5.4.5允許差
同一試樣三次測(cè)定結(jié)果之差,應(yīng)不超過(guò)平均值的5%。
5.5分配系數(shù)Kav
5.5.1試劑
5.5.1.1葡聚糖:Mp=200000;Mp=50000;Mp=10000。
5.5.1.7BufferA(50mMPB-0.15MNaCl,pH7.0)緩沖液:稱取10.93g磷酸氫二鈉、3.04g
磷酸二氫鈉和8.76gNaCl,加水溶解,調(diào)pH7.0,最后定容至1000mL。
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5.5.2儀器
5.5.2.1中低壓層析系統(tǒng)。
5.5.2.2玻璃層析柱:Φ1.00cm×40.00cm。(柱子長(zhǎng)度再修改下)
5.5.2.30.45μm過(guò)濾膜。
5.5.2.4玻璃濾瓶。
5.5.2.5砂芯漏斗(G3)。
5.5.2.6真空泵:極限真空0.10MPa。
5.5.3測(cè)定步驟
5.5.3.1樣品處理
方法同5.1.3.1。
5.5.3.2樣品裝柱
將介質(zhì)與水的混合漿液倒入層析柱中,堵住柱子出口,靜置,待柱床層穩(wěn)定(Φ1.00
cm×30.00cm,柱體積24.00mL),柱子上端充滿水。將層析柱介入中低壓層析系統(tǒng),連續(xù)
向柱中通入三級(jí)水(10個(gè)柱體積),同時(shí)保證柱壓為0.3Mpa,保持床層穩(wěn)定。
5.5.3.3樣品測(cè)定
以BufferA溶液平衡,流速為2mL/min,先以1%濃度丙酮測(cè)定內(nèi)水相體積Vi,再將不
同分子量的葡聚糖單獨(dú)上樣,依次是葡聚糖Mp=200000;葡聚糖Mp=50000;葡聚糖
Mp=10000,樣品濃度2mg/ml。上樣量200μL。其中葡聚糖Mp=2000000測(cè)定外水相體積
Vo。
5.5.4結(jié)果
根據(jù)公式(5)計(jì)算分配系數(shù)Kav。
………………(5)
式中:
Ve——各樣品的洗脫體積(mL)
Vi——內(nèi)水相體積(mL)
Vo——、外水相體積(mL)
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5.5.5允許差
同一試樣三次測(cè)定結(jié)果之差,應(yīng)不超過(guò)平均值的10%。
5.6非特異性吸附
5.6.1試劑
5.6.1.6細(xì)胞色素C:純度≧98%。
5.6.1.7BufferA(10mM醋酸銨,pH4.1)緩沖液:稱取0.77g醋酸銨,加水溶解,調(diào)pH4.1,
最后定容至1000mL。
5.6.1.8BufferB(50mMPB-0.15MNaCl,pH7.0)緩沖液:稱取10.93g磷酸氫二鈉、3.04g
磷酸二氫鈉和8.76gNaCl,加水溶解,調(diào)pH7.0,最后定容至1000mL。
5.6.1.9細(xì)胞色素C溶液(4mg/mL):稱取10mg細(xì)胞色素C溶于10mLBufferA,上樣
前經(jīng)0.45μm過(guò)濾膜進(jìn)行過(guò)濾。
5.6.2儀器
5.6.2.1中低壓層析系統(tǒng)。
5.6.2.2玻璃層析柱:Φ1.60cm×20.00cm。
5.6.2.30.45μm過(guò)濾膜。
5.6.2.4玻璃濾瓶。
5.6.2.5砂芯漏斗(G3)。
5.6.2.6真空泵:極限真空0.10MPa。
5.6.3測(cè)定步驟方法
5.6.3.1樣品處理
方法同5.1.3.1。
5.6.3.2樣品裝柱
將介質(zhì)與水的混合漿液倒入層析柱中,堵住柱子出口,靜置,待柱床層穩(wěn)定(Φ1.60
cm×5.00cm,柱體積10.00mL),柱子上端充滿水。打開(kāi)柱子入口,連續(xù)向柱中通入三級(jí)
水(10個(gè)柱體積),保持床層穩(wěn)定。
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5.6.3.3樣品測(cè)定
以BufferA溶液平衡,流速為2mL/min,蛋白上樣5mL。經(jīng)BufferA溶液淋洗至淋洗
液沒(méi)有蛋白出現(xiàn),再經(jīng)BufferB洗脫,收集對(duì)應(yīng)洗脫峰。記錄洗脫峰體積V洗脫峰(mL)和
濃度C洗脫峰(mg/mL)。
5.6.4結(jié)果
根據(jù)公式(4)計(jì)算洗脫峰的蛋白含量。
………………(6)
式中:
M——洗脫峰蛋白含量(mg);
C洗脫峰——洗脫峰蛋白濃度(mg/mL);
V洗脫峰——洗脫峰體積(mL)。
根據(jù)公式(5)計(jì)算瓊脂糖白球非特異性吸附情況。
………………(5)
式中:
W非特異吸附——非特異性吸附量(μg/mL);
C洗脫峰——洗脫峰的蛋白濃度(mg/mL);
V洗脫峰——洗脫峰的體積(mL);
5.6.5允許差
同一試樣三次測(cè)定結(jié)果之差,應(yīng)不超過(guò)平均值的20%。
5.7微生物污染
5.7.1儀器
5.7.2.1空培養(yǎng)皿:Φ9.00cm。
5.7.2.2錐形瓶。
5.7.2.3恒溫箱。
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5.7.2.4微量移液器。
5.7.2.5無(wú)菌槍頭。
5.7.2.6旋渦混合器。
5.7.3測(cè)定步驟
5.7.3.1樣品前處理
在空培養(yǎng)皿底部標(biāo)記樣品名稱。按照(GBT5475-2013離子交換樹(shù)脂取樣方法)直接
從產(chǎn)品中抽取5mL樣品,置于50mL砂芯漏斗中抽干5min。取1mL抽干介質(zhì),加入1mL
三級(jí)水,采用旋渦混合器混勻樣品。將含有30mL胰蛋白胨大豆瓊脂培養(yǎng)基的錐形瓶進(jìn)行高
溫滅菌(121°C,20min),待培養(yǎng)基冷卻到40°C時(shí),用微量移液器吸取1mL混勻后的樣
品加入到該錐形瓶中,緩緩混合,把混合物倒入培養(yǎng)皿中,蓋好上蓋。
5.7.3.2凝固混合物
在室溫下使混合物凝固。
5.7.3.3孵育
把培養(yǎng)皿置于恒溫箱中孵育。在孵育期間培養(yǎng)皿需要倒置,在35℃中放置5天。
5.7.4結(jié)果表示
孵育期后檢查培養(yǎng)皿。計(jì)數(shù)菌落形成單位數(shù)(CFU),估計(jì)每毫升樣品中微生物的數(shù)量。
5.7.5允許差
同一試樣三次測(cè)定結(jié)果之差,應(yīng)不超過(guò)5。
5.8化學(xué)穩(wěn)定性
5.8.1試劑
5.8.1.41mM鹽酸(pH3)。
5.8.1.5三級(jí)水(pH7),GB6682-92《分析化學(xué)實(shí)驗(yàn)室用水的規(guī)格及試驗(yàn)方法》。
5.8.1.6100mM氫氧化鈉(pH13)。
5.8.1.7甲醇:色譜純。
5.8.1.8甲醇溶液:10%,吸取100mL的甲醇到1000mL的容量瓶中,定容。
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5.8.1.9標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì):羥甲基糠醛純度≥99%。
5.8.1.10標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備溶液:準(zhǔn)確稱取適量的羥甲基糠醛標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)于100mL容量瓶,用10mL
甲醇溶解,定容,配成0.20mg/mL的標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液。此溶液可在溫度低于4℃冰箱中冷藏保存
兩個(gè)月。
5.8.1.11標(biāo)準(zhǔn)工作溶液:分別吸取適量的羥甲基糠醛標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備溶液至100mL容量瓶中,用
10%甲醇溶液稀釋至刻度,配成0.01μg/mL,0.03μg/mL,0.05μg/mL,0.08μg/mL,0.10μg/mL,
0.20μg/mL,1.0μg/mL,2.0μg/mL,4.0μg/mL,6.0μg/mL,10μg/mL標(biāo)準(zhǔn)工作溶液。當(dāng)天新
鮮配制。
5.8.2儀器
5.8.2.1帶蓋玻璃試管。
5.8.2.2玻璃濾瓶。
5.8.2.3砂芯漏斗(G3)。
5.8.2.4真空泵:極限真空0.10MPa。
5.8.2.5旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀。
5.8.2.6高效液相色譜儀:配有紫外檢測(cè)器。
5.8.2.7注射器:10mL。
5.8.2.8過(guò)濾膜:0.45μm。
5.8.3測(cè)定步驟
5.8.3.1樣品處理
方法同5.1.3.1。
5.8.3.2將樣品置于不同pH溶液中培養(yǎng)
取若干份1.00g抽干白球置于帶蓋玻璃試管內(nèi)。將上述pH3-13的溶液各10mL分別置
于各試管內(nèi),平行實(shí)驗(yàn)三次。樣品管在40°C條件下培養(yǎng)7天。7天后,上層清液被轉(zhuǎn)移到
干凈的試管內(nèi)。
5.8.3.3上機(jī)前樣品處理
上層清液經(jīng)旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)(60℃,50轉(zhuǎn)/分),定容至2mL,加入等體積12M鹽酸,100℃
水解1h。定容至5mL。另取1.00g抽干白球,加入4mL6M鹽酸,100℃水解1h。定容至
5mL。用0.45μm的濾膜過(guò)濾,濾液用于液相色譜儀紫外檢測(cè)器測(cè)定。
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5.8.3.4色譜測(cè)定
1)液相色譜條件
a)色譜柱:DiamonsilC185μm,250mm×4.6mm(i.d.)或相當(dāng)者;
b)流動(dòng)相:甲醇+水(10+90);
c)流速:1.0mL/min;
d)檢測(cè)波長(zhǎng):285nm;
e)柱溫:30℃;
f)進(jìn)樣量:10μL。
2)液相色譜測(cè)定
首先測(cè)定標(biāo)準(zhǔn)工作溶液在上述色譜條件下的峰面積,以峰面積對(duì)相應(yīng)濃度繪制標(biāo)準(zhǔn)工作
曲線,然后測(cè)定未知樣品,用標(biāo)準(zhǔn)工作曲線對(duì)樣品進(jìn)行定量。樣品溶液中羥甲基糠醛的響應(yīng)
值應(yīng)在儀器的線性范圍內(nèi)。在上述色譜條件下,羥甲基糠醛的參考保留時(shí)間為9.79-10.40min
范圍內(nèi),保留時(shí)間隨樣品濃度變化而變化濃度越低保留時(shí)間越小。羥甲基糠醛標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)色譜
圖和含有羥甲基糠醛的樣品色譜圖參加圖。
a
b
圖3羥甲基糠醛標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)色譜圖(其中a為濃度0.01mg/L,b為濃度10mg/L)
15
圖4含有羥甲基糠醛的樣品色譜圖
3)空白試驗(yàn)
除不加樣品試液外,均按上述步驟進(jìn)行。
5.8.4結(jié)果
上清液中的羥甲基糠醛的含量按下式計(jì)算獲得,計(jì)算結(jié)果應(yīng)扣除空白值。
…………(6)
式中:
X——不同pH試樣中羥甲基糠醛的含量(mg/L);
c——從工作曲線求得的試樣溶液中羥甲基糠醛的含量(mg/L);
V——試樣最終的定容體積(mL);
V0——試樣的取樣體積(mL)。
介質(zhì)在不同pH溶液中的脫落按下式計(jì)算獲得。
16
X——不同pH試樣中羥甲基糠醛的含量(mg/L);
X0——抽干白球試樣中羥甲基糠醛的含量(mg/L)。
5.8.5允許差
同一試樣
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