PCR的種類和PCR儀普通PCR梯度PCR實時熒光定量PCRLongGeneABIBio-radEppendorf目前一頁\總數三十頁\編于二十二點全觸摸屏PCR儀（Bio-Rad）目前二頁\總數三十頁\編于二十二點什么是聚合酶鏈式反應（PCR）？聚合酶鏈式反應(PolymeraseChainReaction，PCR）是模擬DNA的復制過程，在體外特異性擴增DNA片段的方法，從而獲得大量的同一序列DNA。每經過一輪擴增，模板分子數增加一倍，經過n次循環后，模板分子數變為原來的2n倍。目前三頁\總數三十頁\編于二十二點Khorana(1971)等最早提出核酸體外擴增的設想：“經DNA變性，與合適的引物雜交，用DNA聚合酶延伸引物，并不斷重復該過程便可合成tRNA基因。”1985年，KaryMullis在Cetus公司工作期間，發明了PCR。Mullis要合成DNA引物來進行測序工作，卻常為沒有足夠多的模板DNA而煩惱。1983年4月的一個星期五晚上，他開車去鄉下別墅的路上,猛然閃現出“多聚酶鏈式反應”的想法。1983年12月，Mullis用同位素標記法看到了10個循環后的49bp長度的第一個PCR片段；1985年10月25日申請了PCR的專利，1987年7月28日批準（專利號4,683,202），Mullis是第一發明人；1985年12月20日在Science雜志上發表了第一篇PCR的學術論文，Mullis是共同作者；1986年5月，Mullis在冷泉港實驗室做專題報告，全世界從此開始學習PCR的方法。目前四頁\總數三十頁\編于二十二點目前五頁\總數三十頁\編于二十二點20212223N:MolecularnumberN0:Originalnumbern:CyclesE:efficiencyN=N0X2nPCR的指數擴增N=N0X（1+e)n目前六頁\總數三十頁\編于二十二點目前七頁\總數三十頁\編于二十二點PCR擴增過程DNA模板變性退火:引物+模板新鏈延伸50~60℃72℃30-40次循環引物耐熱的DNA聚合酶退火溫度：45-60℃延伸時間：1-2kb/min循環數：30-40目前八頁\總數三十頁\編于二十二點PCR試劑的作用及使用濃度范圍1、DNA模板(template)：λ

噬菌體的質粒DNA(幾納克~幾微克)2、dNTP:4種dNTP混和物。20-200umolL。大于50mmol/L可抑制Taq酶的活性。3、10×PCR緩沖液(buffer):組分如下:

15mmol/LMgCl2（影響引物退火和解鏈的溫度，影響產物的特異性，影響引物二聚體的形成。濃度范圍：。濃度太低無PCR擴增，太高則會出現非特異性擴增）

500mmol/LKCl(有利于引物與模板退火，濃度太高則抑制酶活性)、

100mmol/LTris.HCl(pH8.3)（緩沖PH）

0.1%明膠（穩定酶的活性）4、引物(primer):上游引物（M13F），下游引物（M13R）（引物終濃度：）6、TaqDNA聚合酶目前九頁\總數三十頁\編于二十二點《分子克隆3》提供的PCR標準反應條件：模板1pg-1μg引物1μmol/LDNA聚合酶1－5單位Mg2＋1.5mmol/LdNTPs200μmol/LKCl50mmol/L目前十頁\總數三十頁\編于二十二點影響PCR反應的關鍵因素1.引物的質量與特異性；2.

PCR循環條件（退火溫度）；3.Mg2+濃度；4.模板DNA的質量；5.酶的質量。目前十一頁\總數三十頁\編于二十二點DNA模板模板濃度：0.01-1ng（plasmid,phage）；0.1-1ug（genomicDNA）；10倍稀釋（cDNA）;模板中是否含有蛋白質雜質模板中是否含有Taq酶抑制劑（苯酚）目前十二頁\總數三十頁\編于二十二點Enzymeconcentration

TaqDNApolymeraseisbetween1and2.5units.

催化一典型的PCR反應約需酶量2.5U(指總反應體積為100ul時)，濃度過高可引起非特異性擴增，濃度過低則合成產物量減少dNTP

Aworkingstockcontaining1mMeachdNTPisrecommendeddNTP的質量與濃度和PCR擴增效率有密切關系，多次凍融會使dNTP降解。目前十三頁\總數三十頁\編于二十二點Mg2+濃度：

0.5-2.5mM較合適。Mg2+濃度過高，反應特異性降低，出現非特異擴增，濃度過低會降低TaqDNA聚合酶的活性，使反應產物減少。Mg2+對PCR擴增的特異性和產量有顯著的影響，在一般的PCR反應中，各種dNTP濃度為200umol/L時，Mg2+濃度為1.5～2.0mmol/L為宜。引物濃度：引物的濃度會影響特異性。最佳的引物濃度一般在0.1到0.5μM。較高的引物濃度會導致非特異性產物擴增。目前十四頁\總數三十頁\編于二十二點變性溫度和時間

：94-95Cfor30seconds。

變性不完全,往往使PCR失敗，但變性溫度過高或時間過長都會導致酶活性的損失。退火溫度：

通常PCR的退火溫度選擇為Tm-5oC;

退火溫度越高,所得產物的特異性越高。有些反應甚至可將退火與延伸兩步合并，完成整個擴增循環,既省時間又提高了特異性。

引物為20mer以下時：Tm=2℃×(A+T)+4℃×(G+C)

引物為20mer以上時：Tm=81.5十0.41×(GC％)-600/L其中L為引物的長度。目前十五頁\總數三十頁\編于二十二點

延伸時間：1-2kb/min.

延伸時間過長會導致產物非特異性增加。但對很低濃度的目的序列,則可適當增加延伸反應的時間。一般在擴增反應完成后,都需要一步較長時間(10min)的延伸反應,以獲得盡可能完整的產物。

循環數：

35cycles

循環次數過多，會使PCR產物中非特異性產物大量增加。目前十六頁\總數三十頁\編于二十二點退火溫度對PCR產物量和特異性的影響目前十七頁\總數三十頁\編于二十二點PCR常見問題假陰性：

無擴增條帶（漏加模板、引物或酶；酶失效等；引物不合適）假陽性：非特異性擴增帶（退火溫度偏低；引物不合適；Mg2+濃度不合適）；

目前十八頁\總數三十頁\編于二十二點為什么可以通過PCR擴增得到特異片段模板DNA1st2nd3rd特異性擴展片段%=0%特異性擴展片段%=25%特異性擴展片段%=50%4th特異性擴展片段%=68.75%.....目前十九頁\總數三十頁\編于二十二點PCR的特點簡便、快速一次性加好反應液，1～3小時完成擴增，擴增產物一般用電泳方法即可檢測分析對標本的要求低血液、體腔液、洗嗽液、毛發、細胞、活組織等的粗提DNA靈敏度高理論上1～3個DNA分子經PCR擴增可獲得百萬以上個相同的DNA分子特異性強擴增的產物與模板分子特異區域完全相同目前二十頁\總數三十頁\編于二十二點PCR的應用研究基因克隆，DNA測序，分析突變診斷細菌、病毒、寄生蟲檢測，腫瘤檢測和診斷，轉基因產品的檢測，動植物檢疫法醫犯罪現場標本分析其他……目前二十一頁\總數三十頁\編于二十二點實驗材料與試劑1、DNA模板(template)：λ

噬菌體的質粒DNA2、dNTP:4種dNTP混和物3、10×PCR緩沖液(buffer):組分如下:

15mmol/LMgCl2

500mmol/LKCl100mmol/LTris.HCl(pH8.3)

0.1%明膠4、引物(primer):上游引物（M13F），下游引物（M13R）（見“實驗指導”）6、TaqDNA聚合酶(Taqpolymerase)

目前二十二頁\總數三十頁\編于二十二點PCR的基本步驟1、PCR反應體系的建立取0.2ml的薄壁離心管，按表1順序加入試劑→稍混勻，短暫離心把溶液甩至管底。2、PCR的變溫程序（熱循環反應）按表2設置PCR反應的變溫程序→把離心管放進PCR儀進行擴增→反應結束后低溫保存或檢測3、PCR擴增產物的電泳檢測(下次實驗)目前二十三頁\總數三十頁\編于二十二點PCR的基本步驟1、PCR反應體系的建立（2人一組）取0.2ml的薄壁離心管，按表1順序加入試劑→稍混勻，短暫離心把溶液甩至管底。試劑標記成份1份體積(μl)H2OddH2O17.3Buffer10×反應緩沖液2.5dNTPdNTPs(2.5mMeach)2P1引物1（10uM）1P2引物2（10uM）1DNAλDNA1rTaqrTaq酶0.2總體積25表1PCR反應體系目前二十四頁\總數三十頁\編于二十二點2、PCR的變溫程序（熱循環反應）

按表2設置PCR反應的變溫程序→把離心管放進PCR儀進行擴增→反應結束后低溫保存或檢測反應階段循環數

溫度持續時間1194℃（預變性）3min23594℃（變性）30s52℃（退火）30s72℃（延伸）30s3172℃（補充延伸）10min4112℃置于12℃可短時間保存PCR產物；若需長時間保存取出后置-20℃保存表2PCR反應的變溫程序目前二十五頁\總數三十頁\編于二十二點引物設計目前二十六頁\總數三十頁\編于二十二點PCR引物設計的原則引物長度：16-30nt(20±2nt)G+C%：40-60%四種堿基應隨機分布，在3’末端不存在連續3個G或C在引物內，尤其是在3’端不應存在二級結構（引物內互補配對）兩個引物之間，尤其是3’端不能互補。兩引物間最好