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文檔簡介
65.020.30CCS
B
4415 DB15/T
3259—2023羊肝細胞體外培養技術規程The
code
of
practice
lamb
in
vitro
2023-12-15
發布 2024-01-15
實施內蒙古自治區市場監督管理局 發
布DB15/T
3259—2023 本文件按照GB/T
1.1—2020《標準化工作導則
第1部分:標準化文件的結構和起草規則》的規定起草。本文件由內蒙古自治區農牧業科學院提出。本文件由內蒙古自治區畜牧業標準化技術委員會(SAM/TC
19)歸口。本文件起草單位:內蒙古自治區農牧業科學院。拉、劉威、寶華、胡曉曉、李文婷、付樂。DB15/T
3259—20231 范圍本文件規定了羊肝細胞體外培養技術規程的程序確立、工作區條件和方法。本文件適用于羊的肝細胞體外培養。2 規范性引用文件文件。GB/T
6682分析實驗室用水規格和試驗方法3 術語和定義下列術語和定義適用于本文件。肝細胞體外培養 in
culture
of
以羊肝臟組織為材料,經體外培養、分離出呈圓球形、分散狀態細胞的過程。4 設施設備工作區應包括準備室、緩沖間、無菌室及細胞保存室。無菌室應配備超凈工作臺、紫外燈、酒精燈、二氧化碳培養箱等相關設備。細胞保存室應配備冰箱、超低溫冰箱和液氮罐等設備。5 方法試劑與溶液配制5.1.1 如無特別說明,所用試劑均為分析純。5.1.2 本標準所用水,一律應符合
GB/T
6682
中三級水。5.1.3 磷酸氫二鈉、氯化鈉、鹽酸、氯化鈣、氯化鉀、氫氧化鈉、磷酸氫二鉀、氫氧化鉀、葡萄糖、
1640
RPMI16404-(2-羥乙基HEPESPBS0.4%臺盼藍溶液。5.1.4 肝素鈉:將
1
g
肝素鈉溶解于
mL
水中,用
0.22
μm
濾膜過濾除菌,分裝并保存于
箱中備用。×10
mol/L
的胰島素母液,用
0.22
μm×10
mol/L
的胰島素母液,用
0.22
μm
濾膜過濾除菌,分裝并保存于-80
℃冰箱中備用。5.1.13 RPIM1640
貼壁培養液:在每
200
mL
RPIM1640
基礎培養液中加入
mL
胎牛血清、10 mol/L的胰島素
0.460
mL、10 mol/L
的地塞米松
16
μL、雙抗
2
mL,5
mg/mL
的維生素
C
8
μL
0.22
μm5.1.5 Ⅳ型膠原酶:準確稱取
mg
的Ⅳ型膠原酶粉末溶解于
1
的基礎培養液中,用
0.22
μm
濾膜過濾除菌,即可配制成
50
的Ⅳ型膠原酶,配置完成后立即使用。5.1.6 雙抗:準確稱取
1
g
鏈霉素和
0.625
g
青霉素,充分溶解于
mL
的水中,用
0.22
μm
過濾除菌,分裝并保存于
℃冰箱中備用。5.1.7 胰島素母液:50
mg
胰島素溶解于
20
mL
0.01
mmol/L
4.36
mol/L-45.1.8Percoll
細胞分離液:取
mL
Percoll
液,加入
3
mL
PBS
液(×)混勻,再從混勻的液體中取
9
mL
加入
15
(1×),與離心后的肝細胞沉淀混合。5.1.9 灌流液
A:準確稱取
g
氯化鈉、0.4995
g
氯化鉀、2.3831
g
HEPES、0.4500
g
葡萄糖和
0.1861
g
800
1000
mL
1
mmol/L
鹽酸或
l
mmol/L氫氧化鈉調整
pH
7.2。在無菌超凈工作臺,按
1:100
加入雙抗,用
0.22
μm
濾膜過濾除菌,4
℃保存備用,使用前
℃預熱。5.1.10 灌流液
B:準確稱取
g
氯化鈉、0.4995
g
氯化鉀、6.8493
g
HEPES、0.4500
g
葡萄糖和
g
氯化鈣,溶于
800
mL
水中,加水定容至
1000
0.22
μm
濾膜過濾除菌,4
℃保存備用,使用前
℃預熱。5.1.11 灌流液
C:在灌流液
B
的基礎上,每
500
B
2
的
50
g/L
的
IV
膠原酶母液,使其含有
的
IV
膠原酶。用
0.22
μm
濾膜過濾除菌,現配現用,使用前
37
℃預熱。5.1.12 RPIM1640
基礎培養液:將一袋
RPIM1640
粉末培養基于
1
L
g
碳酸氫鈉調節
0.22
m
的過濾器過濾除菌,放
冰箱冷藏備用。-6-6濾膜過濾除菌,分裝封口,4
℃保存備用。5.1.14 RPIM
1640
RPIM1640
基礎培養液中添加
5%的胎牛血清和
0.22
μm濾膜過濾除菌,分裝封口,4
℃保存備用。5.1.15 凍存液:將胎牛血清、
及
RPMI1640
培養液按
2:1:7
比例混合,用
0.22
μm
濾膜過濾除菌,現配現用。培養方法5.2.1 肝細胞分離及培養5.2.1.1 羊空腹
24
h
后側臥保定,腹部剪毛消毒后靜脈麻醉,靜脈注射每千克體重
1500
IU
的肝素鈉。剖開腹腔無菌取肝臟尾狀突約
g,置于無菌器皿內迅速將其轉入細胞間。5.2.1.2 清洗肝臟尾狀突表面血跡,對切面進行修整使血管充分暴露,切面的血管數一般為
2~3
灌注時灌流液滴灑,另一端灌注灌流液。5.2.1.3 灌注灌流液
A,灌注液流速約為
50
mL/min,持續
min~15
min。5.2.1.4 灌注灌流液
B,灌注液流速約為
50
mL/min,隨著灌流液的注入,肝臟尾狀突逐漸變得充盈,尾狀突由中間至四周從暗紅色變至棕白色,流出的灌流液由血色變澄清。5.2.1.5 灌注灌流液
C,灌注液流速約為
20
mL/min,尾狀突逐漸變軟,且流出的灌流液逐漸混濁。5.2.1.6
mL~50
mL
和結締組織去除,剪去周邊未被消化部分。5.2.1.7
100
目(150
μm)、
目
μm)及500
目
(30
μ細胞篩過濾消化后的肝組織。5.2.1.9 用貼壁培養液將細胞懸液調整為
2.6
個5.2.1.9 用貼壁培養液將細胞懸液調整為
2.6
個×
個
2
mL,5.2.1.8 收集肝細胞懸液,用
500
r/min
冷凍離心機離心
5
~10
min,棄上清液用
RPMI1640
培養液清洗
2~3
次,用
RPMI1640
貼壁培養液重懸,0.4%臺盼藍檢測細胞活率,血細胞計數板計數。6置于二氧化碳培養箱
37
℃、5%
CO2條件下培養。5.2.1.10 4
h
后換成生長培養液,以后每
2
d
更換一次培養液,并對肝細胞形態及生長情況進行跟蹤記錄。5.2.2 肝細胞純化5.2.2.1 將肝細胞懸液用
RPMI1640
生長培養液清洗
2~3
次,500
5
min~min,棄上清液。5.2.2.2 用
Percoll
細胞分離液重懸肝細胞,2000
r/min
冷凍離心機離心
得到純化的肝細胞。5.2.2.3 用
RPMI1640
生長培養液重懸,
r/min
冷凍離心機離心
3
min
2
RPMI1640生長培養液重懸肝細胞制成純化的肝細胞懸液備用。5.2.3 肝細胞凍存5.2.3.1 在細胞匯合前,將細胞同培養液一同吸出,放入
4
mL
離心管中。5.2.3.2 在培養皿中加入
1
mL
4~5
次,使胰蛋白酶溶液與細胞充分接觸。5.2.3.3 1000
5
,吸出含酶的上清溶液。5.2.3.4 將細胞生長面洗脫,用
mL
培養液再次懸浮,
r/min
離心
5
1
凍存液重新懸浮細胞。5.2.3.5 加入適量凍存液,為凍存做準備。5.2.3.6 將
1
凍存液懸浮的細胞移至
離心管中,用脫脂棉將凍存管包好后放入樣品袋中,管口朝上放入
4
℃冰箱
2
h
左右,取出放入
℃冰箱過夜,次日將其移至
℃冰箱中過夜,最后投入液氮罐中保存。5.2.4 肝細胞復蘇5.2.4.1 將凍存管于
37
5.2.4.2 用
RPMI1640
培養液稀釋,400
r/min
5
,棄上清液,加入培養液吹打均勻,用移液器將細胞移入加有培養液的培養皿中,放入
5%
2恒溫培養箱中培養。5.2.5 肝細胞傳代5.2.5.1 當細胞鋪滿培養皿底約
后,將培養皿移入超凈工作臺,倒掉培養皿內培養液。5.2.5.2向培養皿中加入
0.25%胰蛋白酶,37
℃消化
1
至
80%的細胞脫壁。5.2.5.3
胎牛血清的
RPMI1640
于
37
℃、5%
2恒溫培養箱中靜置培養。羊肝細胞體外培養程序流程圖參見附錄
A。DB15/T
3259—2023
附錄 A(資料性)羊肝細胞體外培養程序流程圖羊肝細胞體外培養程序流程圖參見圖A.1。肝細胞分離及培養(見
5.2.1)羊只處理(見
)肝臟取樣后預處理(見
)灌注灌流液(見
5.2.1.3、、5.2.1.5)去除結締組織(見
)收集過濾消化后的肝組織(見
5.2.1.7)離心、重懸細胞(見
5.2.1.8)接種、培養(見
5.2.1.9、)肝細胞純化(見
5.2.2)肝細胞凍存(見
5.2.3)肝細胞復蘇(見
5.2.4)肝細胞傳代(見
5.2.5)圖A.1
羊肝細胞體外培養程序流程圖DB15/T
3259—2023參
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