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文檔簡(jiǎn)介
供生物科學(xué)、生物技術(shù)專(zhuān)業(yè)用
分子生物學(xué)實(shí)驗(yàn)指導(dǎo)
1.分子生物學(xué)實(shí)驗(yàn)須知
1.1.基本要求
1.進(jìn)入實(shí)驗(yàn)室的學(xué)生須嚴(yán)格遵守實(shí)驗(yàn)室規(guī)則。
2.課前復(fù)習(xí)有關(guān)課堂講授的理論知識(shí),并根據(jù)實(shí)驗(yàn)指導(dǎo)認(rèn)真預(yù)習(xí)實(shí)驗(yàn)。
3.明確實(shí)驗(yàn)?zāi)康模莆諏?shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)的原理。做到心中有數(shù),有備而來(lái)。
4.認(rèn)真對(duì)待每一次實(shí)驗(yàn),按照要求和擬定好的流程進(jìn)行操作,詳細(xì)、真
實(shí)地記錄實(shí)驗(yàn)中每一個(gè)細(xì)小變化。
5.實(shí)驗(yàn)結(jié)束后須按照要求完成實(shí)驗(yàn)報(bào)告,實(shí)驗(yàn)報(bào)告書(shū)寫(xiě)工整、內(nèi)容翔
實(shí)、表述清晰、分析有據(jù)。
除此之外,鼓勵(lì)學(xué)生積極參與實(shí)驗(yàn)準(zhǔn)備;保持活躍的思維,積極與教師交
流實(shí)驗(yàn)體會(huì)。
1.2.實(shí)驗(yàn)室規(guī)則
1.保持肅靜不得喧嘩、嬉鬧,使用器物時(shí)輕拿輕放,討論問(wèn)題時(shí)不得影
響他人。
2.保持整潔上實(shí)驗(yàn)課時(shí)應(yīng)穿工作服,書(shū)包等物品應(yīng)在規(guī)定位置擺放整
齊,盡量避免被試劑等實(shí)驗(yàn)用品玷污。實(shí)驗(yàn)結(jié)束后,按具體要求清洗實(shí)驗(yàn)用
品,所用的試劑和器材整理后放回原處,實(shí)驗(yàn)廢品放人指定地方。
3.嚴(yán)格操作做實(shí)驗(yàn)時(shí)嚴(yán)格遵守操作規(guī)程,仔細(xì)觀(guān)察,如實(shí)記錄。玻璃器
皿輕拿輕放,移液器吸頭、滴管專(zhuān)用專(zhuān)放,防止交叉污染。使用精密儀器必須
在教師的指導(dǎo)下進(jìn)行,不得隨意動(dòng)用。使用微量移液器前,必須熟悉微量移液
器的使用方法。
4.注意節(jié)約愛(ài)惜樣品、器材,節(jié)約試劑、水電,防止器物的破損。使用
不當(dāng)所造成的損壞須酌情賠償。
5.保證安全室內(nèi)嚴(yán)禁吸煙。使用有毒試劑、腐蝕性試劑等危險(xiǎn)物品時(shí)要
嚴(yán)格按要求操作,注意防護(hù)、防止污染。如有意外立即報(bào)告。實(shí)驗(yàn)完畢后,清
潔室內(nèi)衛(wèi)生,關(guān)好門(mén)、窗、水、電等。
1.3.實(shí)驗(yàn)室常識(shí)
1.稱(chēng)量固體試劑,應(yīng)用硫酸紙,不可用濾紙。量筒是量器,不可用做容
器。
2.取用試劑和溶液后,應(yīng)立即將瓶塞塞嚴(yán),放回原處。取出的試劑和標(biāo)
準(zhǔn)溶液,如未用盡,切勿倒回瓶?jī)?nèi),以免污染。
3.使用有揮發(fā)性或毒性的試劑和進(jìn)行會(huì)產(chǎn)生有異味氣體的實(shí)驗(yàn)操作時(shí),
均應(yīng)在通風(fēng)柜內(nèi)。試劑用后嚴(yán)密封口,盡量縮短操作時(shí)間、減少外泄。操作者
最好戴口罩、手套進(jìn)行操作。
4.配制完成的試劑須及時(shí)做好標(biāo)記,標(biāo)簽上要寫(xiě)明試劑的名稱(chēng)、規(guī)格、
濃度、配制日期及配制
人等必要信息,標(biāo)簽應(yīng)貼在試劑瓶上1/3處。5.使用離心機(jī)前必須配
平樣品,離心時(shí)若有異常的噪音應(yīng)立即停止機(jī)器,關(guān)閉電源后方可仔細(xì)查找原
因,排除故障前不得繼續(xù)使用離心機(jī)。低溫離心結(jié)束后,離心機(jī)應(yīng)敞開(kāi)晾至室
溫并清理凝結(jié)水后方可關(guān)閉。操作中如有樣品不慎灑入離心機(jī)的管槽或底盤(pán),
必須及時(shí)清理后才能繼續(xù)使用。6.應(yīng)在帶習(xí)老師指導(dǎo)下使用貴重或精密儀
器,并要嚴(yán)格遵守操作規(guī)程,如遇試劑濺污儀器,及時(shí)用潔凈紗布擦拭。發(fā)生
故障時(shí),應(yīng)立即關(guān)機(jī),告知帶習(xí)老師,不得擅自拆修。
7.實(shí)驗(yàn)用過(guò)的器皿應(yīng)及時(shí)用消毒液或自來(lái)水浸泡,以便于清洗和減少試
劑對(duì)器皿的侵蝕。洗凈的器皿應(yīng)倒置架上自然干燥,不能用抹布擦拭。
1.4.實(shí)驗(yàn)室安全防護(hù)
1.最后離開(kāi)實(shí)驗(yàn)室時(shí),一定要將室內(nèi)檢查一遍,應(yīng)將水、電等關(guān)好,門(mén)
窗鎖好。
2.使用電器設(shè)備時(shí),如烤箱、恒溫水浴鍋、離心機(jī)、電泳儀等,嚴(yán)防觸
電,絕不可用濕手開(kāi)關(guān)電閘和電器開(kāi)關(guān)。
3.使用高壓鍋消毒時(shí),人不得離開(kāi)。易燃、易爆、腐蝕、有毒等試劑,
不能放入高壓鍋內(nèi)消毒,以防發(fā)生爆炸,造成人身傷亡。
4.使用可燃物,特別是易燃物時(shí),如乙酸、丙酮、乙醇等,應(yīng)特別小
心。
5.凡使用腐蝕性試劑如濃酸、濃堿等,必須極為小心地操作,防止濺
出,一旦有灑出,立即用自來(lái)水沖洗。
6.廢液應(yīng)按要求妥善處理。
2.實(shí)驗(yàn)常用儀器介紹
2.1.微量移液器
微量移液器是一種在一定容量范圍內(nèi)可隨意調(diào)節(jié)的精密取液裝置,基本原
理是依靠裝置內(nèi)活塞的上下移動(dòng),推動(dòng)按鈕帶動(dòng)推動(dòng)桿使活塞向下移動(dòng),排除
活塞腔內(nèi)的氣體;松手后,活塞在復(fù)位彈簧的作用下恢復(fù)原位,從而完成一次
吸液過(guò)程。常用的有Eppendorf公司各種規(guī)格的的微量移液器,其他還有美
國(guó)TOMOS公司、德國(guó)BRAND公司等產(chǎn)品。目前使用的移液器有整支可消
毒移液器、半支可消毒移液器、電動(dòng)移液器、PCR專(zhuān)用移液器。此外還有大容
量移液器、電子連續(xù)移液器、瓶口移液器、電子滴定器等不同種類(lèi)的移液器。
微量移液器的標(biāo)準(zhǔn)操作適用的液體有水、緩沖液、稀釋的鹽溶液和酸堿溶
液,其操作步驟第一步按到第一檔,垂直進(jìn)入液面幾毫米,第二步緩慢松開(kāi)控
制按鈕,否則液體進(jìn)入吸頭過(guò)速會(huì)導(dǎo)致液體倒吸人移液器內(nèi)部吸人體積減少,
第三步打出液體時(shí)貼壁并有一定角度,先按到第一檔,稍微停頓幾秒后,待剩
余液體聚集后,再按到第二檔將剩余液體全部壓出。
在使用移液器的過(guò)程中,應(yīng)注意以下幾個(gè)方面:
1)移液器應(yīng)放在專(zhuān)用的架子上,不得隨意放置;
2)移液時(shí)選用適當(dāng)型號(hào)的移液器,不得用大量程的移液器移取小體積樣
品;
3)吸不同的液體時(shí)應(yīng)更換吸頭,防止交叉污染影響實(shí)驗(yàn)結(jié)果;
4)新吸頭在使用前可吸排溶液幾次,浸漬吸頭以消除測(cè)量誤差;
5)移液器吸液后嚴(yán)禁倒置、平放,以免液體倒流損壞活塞;
6)長(zhǎng)時(shí)間不用或剛?cè)〕龅男乱埔浩鲬?yīng)輕輕按壓按鈕數(shù)次,再進(jìn)行正常使
用。
2.2.離心機(jī)
離心機(jī)是實(shí)驗(yàn)中最常用的一類(lèi)儀器,主要用于細(xì)胞的收集和分離、基因片
段的分離以及其它生物樣品的分離制備。離心機(jī)依據(jù)轉(zhuǎn)速不同,可分為低速離
心機(jī)、高速離心機(jī)和超速離心機(jī),轉(zhuǎn)速少于6000r/min的為低速離心機(jī),低于
25000r/min的為高速離心機(jī),大于30000r/min的是超速離心機(jī);依據(jù)溫度控
制不同,又可分為冷凍離心機(jī)和普通離心機(jī),冷凍離心機(jī)帶有制冷系統(tǒng),能夠
控制溫度最低至-20C,普通離心機(jī)不帶制冷系統(tǒng)。
離心機(jī)在每次接通電源使用前,應(yīng)仔細(xì)檢查所用的轉(zhuǎn)頭及離心管有無(wú)裂
紋,或嚴(yán)重腐蝕現(xiàn)象,如有應(yīng)立即更換;保持離心機(jī)腔體內(nèi)清潔,防積水,防
有顆粒狀雜物;配轉(zhuǎn)頭系統(tǒng)時(shí),必須在儀器斷電條件下操作;儀器加速或減速
過(guò)程中,出現(xiàn)短時(shí)振動(dòng)屬正常現(xiàn)象,不必關(guān)斷電源開(kāi)關(guān);若出現(xiàn)中途斷電,切
勿馬上開(kāi)門(mén),必須等電機(jī)停轉(zhuǎn)后方可開(kāi)門(mén);離心時(shí)樣品應(yīng)預(yù)先平衡,使用離心
筒離心時(shí)離心筒與樣品應(yīng)同時(shí)平衡,揮發(fā)性或腐蝕性液體離心時(shí),應(yīng)使用帶蓋
的離心管,并確保液體不外漏,以免腐蝕機(jī)腔。
2.3.電泳裝置
電泳技術(shù)是實(shí)驗(yàn)中不可缺少的重要分析手段。所謂電泳,是指帶電粒子在
電場(chǎng)中的運(yùn)動(dòng),不同物質(zhì)由于所帶電荷及分子量的不同,因此在電場(chǎng)中運(yùn)動(dòng)速
度不同,根據(jù)這一特征,應(yīng)用電泳法便可以對(duì)不同物質(zhì)進(jìn)行定性或定量分析,
或?qū)⒁欢ɑ旌衔镞M(jìn)行組份分析或單個(gè)組份提取制備,這在臨床檢驗(yàn)或?qū)嶒?yàn)研究
中具有極其重要的意義。
電泳一般分為自由界面電泳和區(qū)帶電泳兩大類(lèi),自由界面電泳不需支持
物,而區(qū)帶電泳則需用各種類(lèi)型的物質(zhì)作為支持物,常用的支持物有濾紙、醋
酸纖維薄膜、非凝膠性支持物、凝膠性支持物及硅膠薄層等,分子生物學(xué)領(lǐng)域
中最常用的是瓊脂糖凝膠電泳。
電泳裝置是實(shí)現(xiàn)電泳分析的儀器,一般由電泳儀、電泳槽、檢測(cè)單元等組
成。它主要用于檢測(cè)、鑒定各種生物大分子的純度、含量及描述它們的特征,
還可以用于樣品的分離、純化、回收和濃縮。
電泳儀作為電泳時(shí)的外加電源設(shè)備,它既能輸出穩(wěn)定的電流,又能輸出穩(wěn)
定的電壓,起到在被分離樣品兩端加外接電場(chǎng)的作用;電泳槽是電泳的主要部
件,是樣品分離的場(chǎng)所;電泳儀在通電進(jìn)入工作狀態(tài)后,禁止人體接觸電極、
電泳物,也不能到電泳槽內(nèi)取放東西,如需要應(yīng)先斷電,以免觸電。同時(shí)要求
儀器必須有良好接地端,以防漏電;在通電后,不要臨時(shí)增加或撥除輸出導(dǎo)線(xiàn)
插頭,以防短路現(xiàn)象發(fā)生,使用過(guò)程中發(fā)現(xiàn)異常現(xiàn)象,如較大噪音、放電或異
常氣味,須立即切斷電源,進(jìn)行檢修,以免發(fā)生意外事故。
2.4.生物安全柜
生物安全柜是為操作具有感染性的實(shí)驗(yàn)材料時(shí),用來(lái)保護(hù)操作者本人、實(shí)
驗(yàn)室環(huán)境以及實(shí)驗(yàn)材料,使其避免暴露于可能產(chǎn)生的感染性氣溶膠和濺出物而
設(shè)計(jì)的。
根據(jù)生物安全防護(hù)水平的差異,生物安全柜也可以分為I級(jí)、II級(jí)和III級(jí)
三種類(lèi)型。I級(jí)生物安全柜可保護(hù)工作人員和環(huán)境而不保護(hù)樣品。氣流原理和
實(shí)驗(yàn)室通風(fēng)櫥一樣,不同之處在于排氣口安裝有HEPA過(guò)濾器。所有類(lèi)型的
生物安全柜都在排氣和進(jìn)氣口使用HEPA過(guò)濾器。H級(jí)生物安全柜是目前臨
床分子診斷實(shí)驗(yàn)室應(yīng)用最為廣泛的柜型,II級(jí)生物安全柜的一個(gè)獨(dú)特之處在于
經(jīng)過(guò)HEPA過(guò)濾器過(guò)濾的垂直層流氣流從安全柜頂部吹下,被稱(chēng)作“下沉氣
流”,下沉氣流不斷吹過(guò)安全柜工作區(qū)域,以保護(hù)柜中的試驗(yàn)品不被外界塵埃
或細(xì)菌污染。按照《中華人民共和國(guó)醫(yī)藥行業(yè)標(biāo)準(zhǔn)YY0569-2005生物安全
柜》中的規(guī)定,II級(jí)生物安全柜依照入口氣流風(fēng)速、排氣方式和循環(huán)方式可分
為4個(gè)級(jí)別:A1型,A2型;B1型和B2型。所有的H級(jí)生物安全柜都可提
供工作人員、環(huán)境和樣品的三重保護(hù)。III級(jí)生物安全柜柜體完全氣密,100%
全排放式,工作人員通過(guò)連接在柜體的手套進(jìn)行操作,適用于高風(fēng)險(xiǎn)的病原生
物研究,如進(jìn)行SARS、埃博拉病毒相關(guān)的實(shí)驗(yàn)等。
另外,需要了解生物安全柜與通風(fēng)柜和超凈工作臺(tái)的區(qū)別。通風(fēng)柜和超凈
工作臺(tái)不屬于生物安全柜,不可使用在涉及微生物材料的實(shí)驗(yàn)或生產(chǎn)過(guò)程中。
通風(fēng)柜(通風(fēng)櫥)是為在化學(xué)實(shí)驗(yàn)過(guò)程中清除腐蝕性化學(xué)氣體和有毒煙霧而設(shè)
計(jì)的,不能有效清除微生物介質(zhì);放置在通風(fēng)柜內(nèi)的微生物樣品會(huì)散播到柜
外,污染實(shí)驗(yàn)室環(huán)境。
超凈工作臺(tái)是為了保護(hù)試驗(yàn)品或樣品而設(shè)計(jì)的,通過(guò)吹過(guò)工作區(qū)域的空氣
防止試驗(yàn)品或樣品受到工作區(qū)域外粉塵或細(xì)菌的污染。一旦微生物樣品放置于
工作區(qū)域,層流空氣將把帶有微生物介質(zhì)的空氣吹向前臺(tái)工作人員而產(chǎn)生危
險(xiǎn)。
在實(shí)驗(yàn)中,被分類(lèi)為可能涉及或者產(chǎn)生有害生物物質(zhì)的操作過(guò)程都應(yīng)該在
生物安全柜內(nèi)進(jìn)行,一般使用13級(jí)的生物安全柜。
2.5.消毒滅菌設(shè)備
實(shí)驗(yàn)中所用的培養(yǎng)基、試劑、器皿、實(shí)驗(yàn)用具等,應(yīng)嚴(yán)格滅菌。常用的滅
菌設(shè)備主要包括濾膜過(guò)濾器和高壓蒸汽滅菌器等。
濾膜過(guò)濾器的過(guò)濾原理主要是分子篩作用,大于膜孔的顆粒被截留(篩除)
在膜的表面,小于膜孔的顆粒通過(guò)膜孔。在實(shí)驗(yàn)中常用來(lái)制備抗生素濾液。
高壓蒸汽滅菌器是利用飽和壓力蒸汽對(duì)物品進(jìn)行迅速而可靠的消毒,適用
于對(duì)醫(yī)療器械、敷料、
玻璃器皿、培養(yǎng)基等進(jìn)行消毒滅菌。在使用過(guò)程中應(yīng)注意:滅菌前應(yīng)先完
全排除鍋內(nèi)冷空氣,使鍋內(nèi)全部充滿(mǎn)水蒸汽時(shí),滅菌才能徹底;滅菌后當(dāng)壓力
降到零后,才能開(kāi)蓋;培養(yǎng)基要嚴(yán)格遵守保壓時(shí)間,既要保壓徹底,又要防止
培養(yǎng)基中的成分變質(zhì)或效力降低,不能隨意延長(zhǎng)時(shí)間。
2.6.水純化設(shè)備
實(shí)驗(yàn)中對(duì)實(shí)驗(yàn)用水的質(zhì)量要求非常高,器皿經(jīng)洗凈后都需要雙蒸水漂洗數(shù)
次,試劑的配制要求用三蒸水甚至超純水,這就要求實(shí)驗(yàn)室必須配備純水裝
置。目前較常用的水純化裝置有石英玻璃雙蒸儲(chǔ)器、離子交換器以及超純水系
統(tǒng)等。
超純水系統(tǒng)是采用預(yù)處理、反滲透技術(shù)、超純化處理等方法,將水中的導(dǎo)
電介質(zhì)幾乎完全去除,
又將水中不解離的膠體物質(zhì)、氣體及有機(jī)物均去除至很低程度的水處理設(shè)
備。所得水可用于高效液相色譜(HPLC)、原子吸收及發(fā)射光譜分析、質(zhì)譜
分析等。
2.7.PCR儀
簡(jiǎn)單地說(shuō),PCR就是利用耐熱DNA聚合酶對(duì)特定基因在體外的大量合
成。PCR儀是體外擴(kuò)增基因最常用的設(shè)備,主要由機(jī)械自動(dòng)裝置、溫度循環(huán)系
統(tǒng)及附屬設(shè)備等構(gòu)成。根據(jù)DNA擴(kuò)增的目的和檢測(cè)的標(biāo)準(zhǔn),可以將PCR儀
分為普通PCR儀,梯度PCR儀,原位PCR儀,實(shí)時(shí)熒光定量PCR儀等種
類(lèi)。
普通的PCR儀是做定性分析和擴(kuò)增基因片段,熒光定量PCR儀比普通的
PCR儀多了熒光信號(hào)采集系統(tǒng)和計(jì)算機(jī)分析處理系統(tǒng),其不僅可對(duì)核酸進(jìn)行擴(kuò)
增,而且可通過(guò)TaqMan熒光探針,SYBRGreen熒光染料等方法對(duì)擴(kuò)增后的
樣品進(jìn)行定量測(cè)定。且一次可同時(shí)檢測(cè)數(shù)百個(gè)樣品量,樣品到達(dá)域值水平所經(jīng)
歷的循環(huán)數(shù)稱(chēng)為Ct值(限制點(diǎn)的循環(huán)數(shù)),可以用來(lái)計(jì)算未知樣品的濃度。
2.8.紫外觀(guān)察儀及凝膠成像分析系統(tǒng)
主要用于瓊脂糖凝膠、聚丙烯酰胺凝膠電泳后結(jié)果的觀(guān)察和記錄。
2.8.1.紫外觀(guān)察儀
DNA片段經(jīng)電泳后肉眼是觀(guān)察不到的,經(jīng)由與漠化乙錠等熒光染料結(jié)合,
在紫外燈的照射下會(huì)產(chǎn)生熒光,從而可以利用來(lái)紫外觀(guān)察儀來(lái)進(jìn)行定性和半定
量觀(guān)察。用于核酸分析的紫外觀(guān)察儀常采用254nm、300nm、365nm等幾個(gè)波
長(zhǎng),在此波長(zhǎng)范圍內(nèi),DNA與漠化乙錠結(jié)合物對(duì)紫外光吸收較強(qiáng),從而誘導(dǎo)
產(chǎn)生590nm波長(zhǎng)的橙紅色熒光。產(chǎn)生的熒光強(qiáng)度與DNA的數(shù)量相關(guān)。
2.8.2.凝膠成像分析系統(tǒng)
通過(guò)紫外觀(guān)察儀只能對(duì)凝膠電泳圖譜進(jìn)行觀(guān)察,如果需要記錄結(jié)果,可以
借助凝膠成像系統(tǒng)拍攝成像。該系統(tǒng)具有強(qiáng)大的圖像采集、檢測(cè)和分析能力,
可以對(duì)DNA、RNA、蛋白質(zhì)等電泳凝膠以及各類(lèi)雜交,放射自顯影結(jié)果進(jìn)行
拍攝、處理、分析和保存。
2.9.其他常用儀器設(shè)備
2.9.1.紫外/可見(jiàn)分光光度計(jì)
紫外/可見(jiàn)分光光度計(jì)廣泛應(yīng)用臨床檢驗(yàn)等領(lǐng)域的教學(xué)和科研工作中,特別
適合對(duì)各種液態(tài)物質(zhì)進(jìn)行定量及定性分析。其應(yīng)用波長(zhǎng)范圍為200~400nm的
紫外光區(qū)、400~850nm的可見(jiàn)光區(qū)。主要由輻射源(光源)、色散系統(tǒng)、檢測(cè)
系統(tǒng)、吸收池、數(shù)據(jù)處理機(jī)、自動(dòng)記錄器及顯示器等部件組成。臨床實(shí)驗(yàn)中常
用紫外260nm、280nm檢測(cè)核酸的含量及純度。
2.9.2.二氧化碳培養(yǎng)箱
二氧化碳培養(yǎng)箱是通過(guò)在培養(yǎng)箱箱體內(nèi)模擬形成一個(gè)類(lèi)似細(xì)胞或組織在生
物體內(nèi)的生長(zhǎng)環(huán)境,如穩(wěn)定的溫度(37℃)>穩(wěn)定的C02水平(5%)、恒定
的酸堿度(pH值:7.2-74)、較高的相對(duì)飽和濕度(95%),來(lái)對(duì)細(xì)胞或組織
進(jìn)行體外培養(yǎng)的一種裝置。其廣泛應(yīng)用于細(xì)胞、組織培養(yǎng)和某些特殊微生物的
培養(yǎng)。
2.9.3.分析天平
分析天平是實(shí)驗(yàn)中不可缺少的重要儀器,充分了解儀器性能及熟練掌握其
使用方法,是獲得可靠實(shí)驗(yàn)結(jié)果的保證。分析天平的種類(lèi)很多,有普通分析天
平、阻尼分析天平及電子分析天平等,需要根據(jù)實(shí)驗(yàn)精確度和量程要求的不同
進(jìn)行選擇。在使用天平的過(guò)程中,要注意以下幾個(gè)方面:
1.天平應(yīng)放置在牢固平穩(wěn)的水泥或木質(zhì)臺(tái)面上,稱(chēng)量室內(nèi)要求清潔、干
燥及較恒定的溫度,同時(shí)應(yīng)避免光線(xiàn)直接照射到天平上;
2.稱(chēng)量時(shí)應(yīng)從側(cè)門(mén)取放物質(zhì),讀數(shù)時(shí)應(yīng)關(guān)閉箱門(mén)以免空氣流動(dòng)引起天平
擺動(dòng);
3.電子分析天平若長(zhǎng)時(shí)間不使用,則應(yīng)定時(shí)通電預(yù)熱,每周一次,每次
預(yù)熱2h,以確保儀器始終處于良好使用狀態(tài);
4.天平箱內(nèi)應(yīng)放置吸潮劑(如硅膠),當(dāng)吸潮劑吸水變色,應(yīng)立即高溫
烘烤更換,以確保吸濕性能;
5.揮發(fā)性、腐蝕性、強(qiáng)酸強(qiáng)堿類(lèi)物質(zhì)應(yīng)盛于帶蓋稱(chēng)量瓶?jī)?nèi)稱(chēng)量,防止腐
蝕天平。
2.9.4.恒溫水浴箱
實(shí)驗(yàn)中,經(jīng)常需要在某一恒定的溫度下進(jìn)行,有的需要恒溫水浴過(guò)夜。此
時(shí)需要用到恒溫水浴箱。使用時(shí)先加蒸儲(chǔ)水于水箱內(nèi),再接通電源,然后調(diào)節(jié)
至所需溫度,禁止干燒。當(dāng)設(shè)置溫度值超過(guò)水溫時(shí),加熱指示燈亮,表明加熱
器已開(kāi)始工作;在水溫達(dá)到所需水溫時(shí),恒溫指示燈亮,加熱指示燈熄滅,此
時(shí)加熱器停止工作。由于水箱內(nèi)水是靜止的,故水溫上下之間有一定差異,需
要經(jīng)過(guò)反復(fù)加熱轉(zhuǎn)換后,水溫才能達(dá)到恒定的狀態(tài)。
3.實(shí)驗(yàn)一基因組DNA的分離純化
核酸作為生命信息的主要載體,是分子生物學(xué)重要的分析研究對(duì)象。核酸
包括核糖核酸和脫氧核糖核酸兩種分子,在細(xì)胞中均與蛋白質(zhì)結(jié)合。真核生物
染色體DNA為雙鏈線(xiàn)性分子;原核生物"染色體"DNA為雙鏈環(huán)狀分子。從生
物體中提取分離特定種類(lèi)的核酸分子,通常是分子生物學(xué)研究的首要任務(wù)和工
作基礎(chǔ)。核酸的分離和提取是分子生物學(xué)研究中重要的技術(shù),核酸樣品質(zhì)量的
好壞直接關(guān)系到實(shí)驗(yàn)的成敗。
基因組是細(xì)胞中包括編碼序列和非編碼序列在內(nèi)的全部DNA分子,包含
了該物種生長(zhǎng)、發(fā)育、繁殖等各項(xiàng)生理活動(dòng)的幾乎全部信息,對(duì)基因組的結(jié)
構(gòu)、組成以及表達(dá)調(diào)控的研究是至關(guān)重要的,而研究的起點(diǎn)就是要獲得純度
高,產(chǎn)率好,且不含蛋白質(zhì)、糖類(lèi)、酚、氯仿等污染基因組以用于下游分析。
基因組DNA來(lái)源不同、性質(zhì)不同以及用途不同,其分離方法也不盡相
同,本實(shí)驗(yàn)以人體外周血細(xì)胞和原核生物細(xì)菌基因組抽提為例,介紹制備基因
組樣品的常用方法。
3.1.第一部分大腸桿菌DNA的分離純化
3.1.1.實(shí)驗(yàn)原理
DNA提取的方法很多,根據(jù)實(shí)驗(yàn)用途可繁可簡(jiǎn)。苯酚抽提法為經(jīng)典方法,
是利用核酸與蛋白質(zhì)對(duì)苯酚和氯仿的變性作用具有的不同反應(yīng)性分離核酸與蛋
白質(zhì)。用苯酚抽提和離心以后,樣品中的蛋白質(zhì)成分被變性,或者變成不溶性
物質(zhì),而核酸則溶解在水相溶液中。苯酚抽提通常采用苯酚、氯仿的混合溶
液。這種混合液a.相對(duì)減少酚的用量,并最終可除去殘留的酚,減輕對(duì)DNA
的破壞;b.使蛋白變性更徹底;c.抑制核酸酶的活性;隨后用氯仿:異戊醇抽
提,將殘留苯酚從含核酸的水相中除去。
3.1.2.實(shí)驗(yàn)?zāi)康?/p>
1.掌握酚-氯仿抽提法的原理。
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2.熟練操作酚抽提法分離DNA的實(shí)驗(yàn)步驟。
3.理解主要試劑的作用。
3.1.3.實(shí)驗(yàn)材料
1.酚/氯仿/異戊醇(25/24/1)酚的重蒸儲(chǔ)和平衡:
①酚易氧化,其氧化產(chǎn)物對(duì)DNA有破壞作用,使用前需要將酚進(jìn)行重蒸
儲(chǔ)。苯酚16513熔化后,用空氣冷凝管進(jìn)行重蒸儲(chǔ),183團(tuán)收集純凈酚。由
于酚是中強(qiáng)酸,使用前要進(jìn)行酚的平衡。方法是在純凈酚中加入等體積的
Imol/LTris.Cl緩沖液(PH8.0)并加入固體Tris,激烈震蕩使酚的PH值平
衡到8.0,保存到棕色瓶中,并加入8-羥基喳寧;表面覆蓋一層
0.1mol/LTris.Cl(PH8.0)防止氧化。
②8-羥基口奎寧的作用:a.抗氧化;b.指示顏色(若黃色的酚變色為紅色則表
明產(chǎn)生了酚的氧化物),易于觀(guān)察分層情況。
2.TES緩沖液(PH8.0):lOmmol/LTris.ClPH8.0
Immol/LEDTAPH8.0
O.lmmol/LNaCl
3.TES-蔗糖緩沖液(蔗糖:增加溶液粘度,維持滲透壓,防止
DNA受機(jī)械剪切力作用而降解。)
4.溶菌酶(50mg/ml,低溫保存,溶菌酶是糖背水解酶,水解菌體細(xì)
胞壁的主要化學(xué)成分肽聚糖中的供1,4糖昔鍵,因而具有溶菌作
用)。
5.10%SDS溶液(當(dāng)室溫低于2013時(shí),需要加熱使其完全溶解后使
用)
6.氯仿/異戊醇(24/1,異戊醇能降低分子表面張力,能減少抽
提過(guò)程中泡沫的產(chǎn)生。同時(shí)異戊醇有助于分相,使離心后的上層水
相、中層變性蛋白相以及下層有機(jī)溶劑相維持穩(wěn)定。)
7.3mol/LNaAC
8.無(wú)水乙醇(-20團(tuán))及70%乙醇四、操作步驟
1.細(xì)菌培養(yǎng)物:取單個(gè)大腸桿菌菌落于LB培養(yǎng)基中,37國(guó)振蕩培養(yǎng)
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過(guò)夜。
2.吸取已培養(yǎng)好的大腸桿菌液8.0ml于lOmlEP管中,4000rpm離心
5分鐘,棄去上清,加入5ml的TES液,強(qiáng)烈振蕩洗菌體1-2次,如上
述方法收集菌體。
3.棄去TES液后,管底菌體大約200位,加入預(yù)冷TES-蔗糖液約
1ml,在冰浴中充分混勻,加入溶菌酶(50mg/ml)40m至終濃度
2mg/ml,EDTA(0.25mol/L)溶液0.5ml至終濃度為0.1mol/L,充分混勻
后,放置在冰浴上5分鐘,充分抑制DNA酶的活性。
4.加入10%SDS溶液0.2ml,輕輕混勻,于37團(tuán)裂解30分鐘。在
37團(tuán)裂解后呈現(xiàn)為粘稠狀液體。若裂解效果不好,將液體分裝到兩個(gè)
1.5mlEP管中加入20mg/ml的蛋白酶K20uL,7013恒溫金屬浴上再消化
10分鐘。
注意!SDS在室溫小于2013時(shí)會(huì)出現(xiàn)白色沉淀,使用前需要3713水浴預(yù)
熱。
5.將試管內(nèi)的裂解液分裝在兩個(gè)L5mlEP管中,約0.6ml。取其中
一管進(jìn)行下一步試驗(yàn),加入等體積(0.6ml)的酚/氯仿/異戊醇
(25/24/1)進(jìn)行抽提。具體操作是:溫和顛倒EP管以混勻兩相液面,使
酚和水兩相在靜置時(shí)呈不分層的乳白色混懸液。然后于12000rpm,離心5
分鐘。注意!①由于酚/氯仿有腐蝕性,務(wù)必戴手套操作此步驟;②使用
專(zhuān)用的刻度吸管而不要用微量移液器加樣。
6.小心取出EP管,將上層水相(含DNA)轉(zhuǎn)移入另一個(gè)1.5mlEP
管中(小心不要吸出水相下的蛋白質(zhì)沉淀),加入等體積的氯仿:異戊醇
(24:1),抽提一次,操作同前。抽提后于
12000rpm,離心5分鐘。(這一步可視具體情況而做取舍)
7.吸取水相于另一EP管中,加入1/10倍體積的NaAC,和2.5倍
體積的冰乙醇(無(wú)水乙醇
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-20因冷凍儲(chǔ)存),顛倒混勻(觀(guān)察DNA絮狀物沉淀)。
8.12000rpm,離心2分鐘,棄去乙醇,加入70%的乙醇輕輕振蕩洗
滌DNA沉淀,12000rpm,
離心2分鐘。棄去70%的乙醇。
9.室溫開(kāi)蓋或真空凍干揮發(fā)殘留的乙醇,但不要讓DNA完全干燥,
視DNA提取量加入20-40|jl
TE于DNA沉淀中,溶解DNA,DNA完全溶解通常需12-24小時(shí),-2013保
存。
3.2.第二部分真核細(xì)胞基因組DNA的分離純化(離心柱層析
法)
3.2.1.實(shí)驗(yàn)原理
真核生物基因組DNA的分離純化在技術(shù)路線(xiàn)設(shè)計(jì)上與原核生物
DNA分離純化沒(méi)有本質(zhì)區(qū)別,但真核生物基因組更龐大,細(xì)胞核內(nèi)染色
體DNA占總DNA的95%以上,這些染色體由組蛋白和雙鏈DNA形
成的核小體組成。所以提取真核生物基因組DNA就必須增加解聚核小體
這一步。
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本次實(shí)驗(yàn)使用了臨床更常見(jiàn)的離心柱層析法去分QIAampDNAMicroProcedure
離DNA,其設(shè)計(jì)思路和原理是①收集抗凝全血
后利用紅細(xì)胞裂解液高效降解紅細(xì)胞,離心后收
集有核細(xì)胞。②使用含SDS的結(jié)合液裂解有核
細(xì)胞的同時(shí)使用蛋白酶K解聚核小體,③基
因組DNA在高鹽離子濃度下選擇性吸附在離心
BindDNA
柱內(nèi)硅基質(zhì)膜上④使用抑制物去除液和70%乙
醇(漂洗液)將蛋白、細(xì)胞代謝物等雜質(zhì)去除。
⑤最后低鹽洗脫液將純凈的基因Wash
DNA從硅基質(zhì)膜洗脫。
3.2.2.實(shí)驗(yàn)材料
1.結(jié)合液CB(細(xì)胞裂解緩沖液):
lOmmol/ETris.Cl(PH8.0)0.1mmol/LEDTA
20jig/mlRNA酶0.5-1.0%SDSReady-to-useDNA
2.蛋白酶K20mg/ml
3.離心吸附柱
4.抑制物去除液IR
5.漂洗液(70%乙醇)
6.洗脫緩沖液EB
7.異丙醇
3.2.3.操作步驟
結(jié)合液CB
?加入異丙醉?>吸附柱吸附
雷白施K處理
洗脫液洗脫漂洗液漂洗抑制物去除
4.抗凝血使用前溫和顛倒混勻3~5次,取200口L抗凝全血加入EP管
中。
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5.加入20UL蛋白酶K,充分混勻,加入200UL結(jié)合液CB立刻充分
混勻(渦旋混勻器或是加樣槍吹打)10秒。
6.70團(tuán)金屬浴5分鐘。如果室溫放置,DNA產(chǎn)量將降低10~20%。
7.冰浴1分鐘冷卻后,加入100UL異丙醇,渦旋混勻器充分混均10
秒,此時(shí)溶液可能出現(xiàn)沉淀。一定要確保離心管底的液體被震蕩起來(lái)。
8.小心將上一步混合液轉(zhuǎn)移吸附柱AC(吸附柱外套一個(gè)收集管)中,避
免觸及中間的白膜。
室溫放置2分鐘,12000rpm室溫離心2分鐘,棄穿透液(收集管中
的廢液)。
9.加500HL抑制物去除液IR到吸附柱中,12000rpm室溫離心1分
鐘,棄穿透液。
10.加500HL漂洗液到離心吸附柱中,12000rpm室溫離心1分鐘,棄穿
透液。
11.加500UL漂洗液到離心吸附柱中,12000rpm室溫離心1分鐘,棄穿
透液。
12.將吸附柱放回到空收集管中,不加任何試劑12000rpm室溫再離心2
分鐘。此步十分重要,否則殘留的乙醇會(huì)污染DNAo
13.室溫放置半分鐘使殘留乙醇揮發(fā)。
14.將離心吸附柱轉(zhuǎn)移到一新的1.5mL塑料離心管中(做好標(biāo)記),加入
50ULDNA洗脫液(預(yù)熱到70國(guó)),室溫放置離心吸附柱1-2分鐘。
12000rpm室溫離心1分鐘,離心管中溶液即為DNA樣品,可以立即
使用或存放于-2013冰箱待用。
3.3.注意事項(xiàng)
1.為保證核酸的完整性和純度,實(shí)驗(yàn)中盡量簡(jiǎn)化操作步驟,縮短過(guò)
程,以減少有害因素破壞。
2.減少化學(xué)因素對(duì)核酸的降解:過(guò)酸和過(guò)堿的環(huán)境都可引起DNA的
一級(jí)結(jié)構(gòu)的破壞,所以實(shí)驗(yàn)中的緩沖液要求使用PH8.0的Tris.Cl緩沖
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液。
3.減少物理因素對(duì)核酸的破壞:分離過(guò)程中的離心、吸取、轉(zhuǎn)移等,
產(chǎn)生的機(jī)械剪切力和高溫都對(duì)DNA的一級(jí)結(jié)構(gòu)有破壞作用。所以實(shí)驗(yàn)中的
振蕩混勻動(dòng)作要溫和輕柔,要求低溫的操作要在冰浴上進(jìn)行。
4.減少生物因素對(duì)核酸的破壞:防止核酸的生物降解主要針對(duì)DNA
酶對(duì)DNA有降解作用,在實(shí)驗(yàn)中要使用DTA來(lái)抑制DNA酶的活性。
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4.實(shí)驗(yàn)二堿裂解法制備質(zhì)粒DNA
4.1.實(shí)驗(yàn)原理
從細(xì)菌中制備質(zhì)粒DNA的方法眾多,目前常用的有堿裂解法等。堿裂解
法抽提效果良好,既經(jīng)濟(jì)且得率又較高,制備的質(zhì)粒DNA可以用于酶切、連
接與轉(zhuǎn)化。
堿裂解法的原理:基于染色體DNA與質(zhì)粒DNA變性與復(fù)性的差異而
達(dá)到分離目的。在pH高達(dá)12.5的堿性條件下,染色體DNA的氫鍵斷裂,
雙螺旋結(jié)構(gòu)解開(kāi)而變性,質(zhì)粒DNA的大部分氫鍵也斷裂,但超螺旋共價(jià)閉
合環(huán)狀的兩條互補(bǔ)鏈不會(huì)完全分離。當(dāng)以pH4.6的KAc高鹽緩沖液調(diào)節(jié)其
pH至中性時(shí),變性的質(zhì)粒DNA又恢復(fù)原來(lái)的構(gòu)型,保存在溶液中,而染色
體DNA不能復(fù)性而形成纏連的網(wǎng)狀結(jié)構(gòu)。通過(guò)離心,染色體DNA與不穩(wěn)
定的大分子RNA、蛋白質(zhì)-SDS復(fù)合物等一起沉淀下來(lái)而被除去。
4.2.實(shí)驗(yàn)?zāi)康?/p>
1.掌握堿裂解法的原理。
2.熟練操作堿裂解法制備質(zhì)粒DNA的實(shí)驗(yàn)步驟。
3.理解主要試劑的作用。
4.3.實(shí)驗(yàn)材料
1.轉(zhuǎn)化好的質(zhì)粒菌株(細(xì)菌菌液)
2.STE:O.lmol/LNaCl
lOmmol/LTris.Cl(pH8.O)
1mmol/LEDTA
3.溶液國(guó):50mmol/L葡萄糖
25mmol/LTris.Cl(pH8.0)
10mmol/LEDTA
4.溶液回:0.2mol/LNaOH
1%SDS
加抽提液時(shí),該系統(tǒng)的pH就高達(dá)12.6,因而促使染色體DNA與質(zhì)粒
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DNA的變性。SDS是離子型表面活性劑,它可以溶解細(xì)胞膜上的脂質(zhì)與蛋
白,因溶解膜蛋白而破壞細(xì)胞膜、解聚細(xì)胞中的核蛋白,還能與蛋白質(zhì)結(jié)合成
為復(fù)合物,使蛋白質(zhì)變性沉淀下來(lái)。
5.溶液團(tuán):5mol/LKAC60ml
冰醋酸15ml
水28.5ml
pH4.8的KAc溶液是為了把pH12.6的抽提液調(diào)節(jié)至中性,使變性的質(zhì)粒
DNA能夠復(fù)性,并能穩(wěn)定存在。高鹽3moi/LKAc有利于變性的大分子染色
體DNA、RNA以及SDS-蛋白復(fù)合物的凝聚而沉淀。染色體DNA因?yàn)橹泻?/p>
了核酸上的電荷,減少相斥力而互相聚合,鉀鹽與RNA、SDS-蛋白復(fù)合物作
用后,形成鉀鹽形式復(fù)合物,使沉淀更完全。
6.酚/氯仿/異戊醇(25/24/1)
7.乙醇
8.TE(PH8.0)(含無(wú)DNA酶的RNA酶20ng/ml)
4.3.1.方案一堿裂解聯(lián)合酚抽提法
4.4.操作步驟
1.增殖細(xì)菌,擴(kuò)增質(zhì)粒
將保存的質(zhì)粒菌株挑取一環(huán),接種于含相應(yīng)抗生素的LB固體培養(yǎng)基平
板上。37國(guó)培養(yǎng)過(guò)液(約
16h);挑取瓊脂培養(yǎng)板上的單菌落,移至200mlLB培養(yǎng)液中(含相應(yīng)的抗
生素)強(qiáng)烈搖蕩過(guò)夜約
16小時(shí)。
此步驟已由實(shí)驗(yàn)準(zhǔn)備老師完成。
2.取1.4ml培養(yǎng)液移至EP管中,12000rpm,離心1分鐘,棄上清。
3.加入1mlSTE溶液強(qiáng)烈振蕩懸浮菌體沉淀,以漂洗菌體,在
12000rpm,離心1分鐘回收菌體。
離心后,去盡上清液。可重復(fù)1-2次。
4.將細(xì)菌沉淀懸浮于lOOul冰預(yù)冷的溶液I中,強(qiáng)烈振蕩混勻5-10秒。
5.加入200m溶液團(tuán),蓋嚴(yán)管蓋顛倒EP離心管5次以混合內(nèi)容物,不要
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強(qiáng)烈振蕩,放置冰上5分鐘左右。
6.加入150ul溶液回,可以將管蓋朝下溫和振蕩10秒鐘,冰水放置3-5
分鐘。
7.12000轉(zhuǎn),4團(tuán)下離心5分鐘,取上清移至1個(gè)新EP管中。
8.加入等體積酚/氯仿/異戊醇(25/24/1)振蕩混勻,12000轉(zhuǎn),4團(tuán)下離
心2分鐘,取上清移至另一管中。
9.加入2倍體積乙醇(室溫),振蕩混勻。室溫下放置2分鐘。
10.12000rpm4EI離心5分鐘,棄上清。
11.加入1ml70%乙醇振蕩漂洗沉淀,12000rpm,4國(guó)離心2分鐘,棄上
清,用消毒的濾紙小條
小心吸凈管壁上的乙醇,將管倒置放在濾紙上,室溫下蒸發(fā)痕量乙醇幾分鐘。
12.加入20-50glTE(pH8.0)(含無(wú)DNA酶的RNA酶20pig/ml),溶解
DNA,通過(guò)電泳鑒定后,一20團(tuán)儲(chǔ)存。
4.5.注意事項(xiàng)
1.整個(gè)實(shí)驗(yàn)中變性與復(fù)性的時(shí)間應(yīng)控制好,注意冰上操作。
2.加入溶液I時(shí)可用力振蕩,而加入溶液13以后則只能夠輕輕混勻。
3.當(dāng)加入溶液團(tuán)5分鐘以后,若溶液不變粘稠(用移液嘴沾吸沒(méi)有絲狀物出
現(xiàn))則終止實(shí)驗(yàn)。檢查使用的試劑是否正確,加量是否正確等后重做。
4.乙醇沉淀質(zhì)粒DNA時(shí)宜在室溫下進(jìn)行,并應(yīng)充分混勻。
4.5.1.方案二堿裂解離心柱法
特點(diǎn):菌體先經(jīng)堿裂解法處理,再通過(guò)離心吸附柱,專(zhuān)一結(jié)合DNA,最
后洗去雜質(zhì),高效快速提取質(zhì)粒DNA,全套操作可以在30分鐘之內(nèi)完成。
使用試劑盒可從1-5mL過(guò)夜培養(yǎng)的菌液純化得到高達(dá)20Hg的高純度質(zhì)
粒DNA(OD260/OD280=1.8-2.0),可以直接用于酶切、轉(zhuǎn)化、測(cè)序及PCR
等。
1,快速、步驟少,整個(gè)操作在半個(gè)小時(shí)之內(nèi)完成。
2.不需要預(yù)平衡離心吸附柱。
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3.純度高,采用本試劑盒提取的質(zhì)粒0D比值在1.8-2.0之間。
4.產(chǎn)量高,每毫升過(guò)夜培養(yǎng)的細(xì)菌可以提取到2-5ug/mLo
4.6.操作方法
1.先將全部RNaseA溶液全部加入到溶液A中,搖勻后再取用,未用完的
溶液A最好在4團(tuán)保存。
2.從篩選平板上挑取單菌落至含抗生素的培養(yǎng)基中,37團(tuán)震蕩培養(yǎng)12-16小
時(shí)(搖床轉(zhuǎn)速200-300)。注意:建議使用LB培養(yǎng)基,營(yíng)養(yǎng)更豐富的培
養(yǎng)基會(huì)使菌體濃度過(guò)高,超過(guò)純化系統(tǒng)處理能力而降低DNA質(zhì)量。另
外,延長(zhǎng)培養(yǎng)時(shí)間有利于提高質(zhì)粒DNA濃度,但是菌液培養(yǎng)過(guò)長(zhǎng)時(shí)間會(huì)
因細(xì)胞死亡、裂解而造成質(zhì)粒DNA濃度降低。
3.用1.5mL離心管收集1-4mL過(guò)夜培養(yǎng)飽和菌液,室溫12,000rpm離心
1分鐘,棄上清,再短暫離心,吸棄殘留液體。
4.加入250"L溶液A,用槍頭充分吹打使菌體重懸(此步在冰上操作效果
更佳)。注意:細(xì)胞未充分懸浮會(huì)影響后續(xù)操作,可以使用漩渦振蕩器幫
助混勻或使用吸頭吹打沉淀至完全混勻。
5.加入250UL溶液B(如果溶液B有沉淀,用前須37團(tuán)加熱溶解后冷卻
到室溫方可使用),溫和反復(fù)顛倒混勻4-6次,看到溶液變粘即可,然后
冰上放置不超過(guò)4-5分鐘。注意:此步處理不能超過(guò)5分鐘,否則DNA
的堿損傷比較嚴(yán)重。同時(shí)千萬(wàn)不要?jiǎng)×艺袷帲駝t基因組DNA斷裂產(chǎn)生
的片段非常容易污染質(zhì)粒DNA。溶液B用后需要將蓋擰緊存放,否則空
氣中的二氧化碳會(huì)進(jìn)入溶液,形成碳酸,中和溶液B中的NaOH,降低
其效率)。
6.加入350UL冰上預(yù)冷的溶液C,反復(fù)顛倒混勻4-6次,可見(jiàn)白色沉淀
物產(chǎn)生,然后冰上放置至少5分鐘。
7.12000rpm離心5分鐘,小心將上清液轉(zhuǎn)移到離心吸附柱中。由于此時(shí)的
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溶液比重較大,有時(shí)候出現(xiàn)沉淀漂浮是正常現(xiàn)象,取上清時(shí)避開(kāi)漂浮的沉
淀即可。靜置2分鐘以讓質(zhì)粒DNA與吸附柱充分結(jié)合,此步十分重要。
8.室溫12,000rpm離心1分鐘,棄收集管中的廢液。
9.加入500PL的通用洗柱液,室溫12,000rpm離心1分鐘,棄收集管中
廢液。注意:通用洗柱液中含乙醇,用后需要將蓋擰緊存放,否則乙醇會(huì)
揮發(fā)。
10.重復(fù)上步1次。
11.室溫12,000rpm離心1分鐘,甩干殘留液體。此步不能省略,否則殘留
乙醇會(huì)影響DNA的后續(xù)使用(如DNA上樣時(shí)不能沉淀到加樣孔中)。
12.將離心吸附柱置于一個(gè)新的1.5mL塑料離心管(自備)中,加入30-100
UL65-8013預(yù)熱的DNA
洗脫液2.0,室溫放置2分鐘。常溫的DNA洗脫液2.0也可以用于洗脫,
但產(chǎn)量稍微有所降低。
13.室溫12,000rpm離心1分鐘,離心管底溶液即質(zhì)粒DNA。
4.7.實(shí)驗(yàn)三瓊脂糖凝膠電泳分離DNA
一、實(shí)驗(yàn)原理
與蛋白質(zhì)分子類(lèi)似,DNA分子也是兩性電離分子。在pH8.0?8.3時(shí),堿
基幾乎不解離,磷酸基團(tuán)全部解離,DNA分子帶負(fù)電荷,在電場(chǎng)中向正極移
動(dòng)。但不同大小和構(gòu)象的DNA分子的電荷密度大致相同,在自由泳動(dòng)時(shí),
遷移率區(qū)別很小,難以分開(kāi)。采用適當(dāng)濃度的瓊脂糖凝膠作為支持介質(zhì),發(fā)
揮其分子篩效應(yīng),則可使分子大小和構(gòu)象不同的DNA分子遷移率出現(xiàn)較大
差異,從而達(dá)到分離目的。電泳后經(jīng)澳化乙錠染色,在紫外光照射下DNA
顯橙紅色熒光,可直接觀(guān)察判斷結(jié)果或照相。
DNA在凝膠中的遷移率與它的分子量的對(duì)數(shù)成反比,若將未知DNA的遷
移距離與已知分子大小的DNA標(biāo)準(zhǔn)物的電泳遷移距離相比較,可以計(jì)算出未
知DNA片段的大小。
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二、實(shí)驗(yàn)?zāi)康恼莆窄傊悄z電泳的原理及操作技術(shù)。
三、實(shí)驗(yàn)材料
1.TBE電泳緩沖液
5xTBE稱(chēng)取Tris54克、硼酸27.5g,0.05mol/LEDTA(pH8.0)20ml,加水
至1000mlo應(yīng)用液為
0.5XTBE,即使用前稀釋10倍。
2.瓊脂糖(agarose,電泳級(jí))
3.澳化乙錠(EB)1Omg/mJ
稱(chēng)1克澳化乙錠溶于100ml水中,在攪拌器上攪拌數(shù)小時(shí),待完全溶解
后,分裝,并用錫薄紙包裹,避光-20團(tuán)保存。
15.6x上樣緩沖液0.25%澳酚藍(lán)或0.25%二甲苯青40%
(W/V)蔗糖溶液
16.DNA分子量標(biāo)記物
如選用限制性?xún)?nèi)切酶肌〃電酶切入DNA后得到的DNA分子量標(biāo)志物,其
參照片段的大小(basepair,bp)為:23130、9416、6557、4361、2332、
2027、564、125o
17.制備好的DNA樣品四、操作步驟
1.量取10ml5xTBE電泳緩沖液加蒸儲(chǔ)水至100ml配置成0.5xTBE電
泳緩沖液。根據(jù)所需濃度稱(chēng)取一定量的瓊脂糖,加入0.5XTBE電泳緩沖液,
加熱熔化,注意觀(guān)察,當(dāng)心煮沸的液體溢出!當(dāng)凝膠冷卻至60回左右時(shí)按
0.5gg/ml加入漠化乙錠溶液,充分混勻。
2.先用透明膠帶封固膠托邊緣,放好梳子,然后再倒入凝膠(凝膠厚度在
5?10mm左右)。
3.在凝膠完全凝固后(室溫放置20?30分鐘),小心移去透明膠帶,將
凝膠放入電泳槽中,加入電泳緩沖液(液面超過(guò)膠面約2?3mm)。再小心取
出梳子。
4.取已制備好的DNA樣品lOgl,加入1/5倍體積的6x樣品緩沖液(即
2可),充分混勻。用移液器將樣品10川小心地加入點(diǎn)樣孔。在另一點(diǎn)樣孔
中,加入DNA分子量標(biāo)記物5pile
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5.蓋上電泳槽,打開(kāi)電源并調(diào)節(jié)電壓,電壓梯度為10V/cm(通常用100
伏)。電泳40-60分鐘,直到澳酚藍(lán)移出2/3的距離(注意:DNA樣品從
負(fù)極向正極泳動(dòng))。
6.將凝膠直接置于透射紫外燈下觀(guān)察結(jié)果,可見(jiàn)到發(fā)出桔紅色的電泳條
帶。如下圖
600bp
500bp
400bp
300bp
200bp
lOObp
五、注意事項(xiàng)
1.在水浴中加熱溶解瓊脂糖時(shí)應(yīng)不斷搖動(dòng)容器,并對(duì)光檢查溶解的情
況,使附于壁上的顆粒完全溶解。若在微波爐上加熱則時(shí)間不要過(guò)長(zhǎng),以免
引起爆沸,如水分蒸發(fā)太多,應(yīng)適當(dāng)補(bǔ)充緩沖液。
2.根據(jù)加樣量選擇合適的梳子,梳子插放的深度不宜過(guò)深,取出梳子時(shí)
應(yīng)在電泳槽的緩沖液中緩慢的水平向上取出,避免在加樣孔中產(chǎn)生氣泡。
3.加樣孔的加樣量依據(jù)DNA樣品中片段的數(shù)量及大小而定。對(duì)于
0.5cm寬的加樣孔,通常上樣量為DNA100~500ngo但上樣體積過(guò)大,可增
加鄰孔之間相互污染的可能性。
4.澳化乙錠是一種強(qiáng)烈的誘變劑并有中度毒性。使用含該染料的溶液時(shí)
須戴手套。凡沾染過(guò)澳化乙錠的器械或物品,必須經(jīng)專(zhuān)門(mén)處理后,才能進(jìn)行清
潔或棄去。
5.紫外光對(duì)眼睛有害,觀(guān)察時(shí)應(yīng)戴護(hù)目鏡或防護(hù)面罩。
第23頁(yè)共46頁(yè)
4.8.實(shí)驗(yàn)四提取真核細(xì)胞總RNA
一、實(shí)驗(yàn)原理
利用高濃度強(qiáng)變性劑異硫氟酸胭使細(xì)胞結(jié)構(gòu)迅速破壞,釋放出RNA分
子,通過(guò)酚/氯仿抽提即可得到總RNAo
二、實(shí)驗(yàn)?zāi)康?/p>
1.掌握RNA提取的基本方法。
2.學(xué)習(xí)如何創(chuàng)造一個(gè)無(wú)RNA酶的環(huán)境。
三、實(shí)驗(yàn)材料
1.無(wú)RNA酶的水的配制在三蒸水中加入0.1%DEPC,37國(guó)放置
12-16小時(shí),高壓滅菌30分鐘,去除殘留的DEPCo
2.變性緩沖液4mol/L異硫鼠酸胭25mmol/L檸檬酸鈉
0.85%十二烷基肌氨酸鈉0.1mol/L。一流基乙醇
3.10%十二烷基肌氨酸鈉
4.2mol/LNaAC(pH4.0)
5.水飽和酚液(pH4.0)
6.Trizol試劑:
胭鹽:1.鹽酸弧;2.異硫氫酸肌;;作用:強(qiáng)烈的蛋白質(zhì)變性劑;
重蒸酚作用:有機(jī)溶劑;蛋白質(zhì)變性劑;
四、操作步驟方案一異硫鼠酸胭一步法
1.取新鮮組織塊(兔肝)500mg,以液氮迅速冷凍或經(jīng)液氮保存組織,放
入研缽中研磨,邊磨邊加液氮,直至磨碎。加入變性液5ml混懸,放入勻漿
器中,冰浴下緩慢勻漿至細(xì)胞裂解,液體變黏稠。
2.在上述裂解液中,加入1/10倍體積的2moi/LNaAC、等體積的水飽
和酚、1/5體積的氯仿:異戊醇(49:1)(每加一種試劑后均應(yīng)充分振蕩混勻),
置冰浴15分鐘,40,12000r/min離心20分鐘,小心吸出上清,注意不要
吸出富含蛋白質(zhì)和DNA的中間界面。
3.加等體積的酚及1/5體積的氯仿:異戊醇(49:1),顛倒混勻,4團(tuán)、12
000r/min離心20分鐘,小心吸取上清。
第24頁(yè)共46頁(yè)
4.加入等體積的異丙醇,一20團(tuán)沉淀1?2h。4團(tuán)、12000r/min離心20
分鐘,棄上清,沉淀用
0.3ml變性液,重新混懸至沉淀完全溶解。加等體積異丙醇,混勻,一20回1?
2h,4團(tuán)、12000r/min離心20分鐘,棄上清,用預(yù)冷的75%酒精洗滌沉淀
1?2次,開(kāi)蓋干燥RNA片刻,加入20p1DEPC
水溶解,-20舊保存。
注意:切勿讓RNA過(guò)分干燥,否則將極難溶解,且測(cè)出的A260/280值
會(huì)低于1.6o
5.對(duì)最后提取的總RNA行1%瓊脂糖凝膠電泳檢驗(yàn)。如可見(jiàn)28S、18S、
5S三條亮度依次遞減的清晰條帶,泳道上無(wú)明顯彌散痕跡,其中28s與18s
條帶亮度比值約為2:1,則說(shuō)明總RNA提取完整無(wú)降解,滿(mǎn)足后續(xù)實(shí)驗(yàn)要
求。
4.8.1.28S18S5S
4.8.1.1.方案二Trizol法
Trizol法適用于人類(lèi)、動(dòng)物、植物、微生物的組織或培養(yǎng)細(xì)菌,樣品量
從幾十毫克至幾克。用Trizol法提取的總RNA無(wú)蛋白和DNA污染。RNA
可直接用于Northern斑點(diǎn)分析,斑點(diǎn)雜交,
Poly(A)+分離,體外翻譯,RNase封阻分析和分子克隆。
1.將組織在液氮中磨成粉末后,再以50-100mg組織加入1mlTrizol液研
磨,注意樣品總體積不能超過(guò)所用Trizol體積的10%o
2.研磨液室溫放置5分鐘,然后以每ImlTrizol液加入0.2ml的比例加入
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氯仿,蓋緊離心管,用手劇烈搖蕩離心管15秒。冰上靜置3min12000rpm,
4團(tuán)離心15分鐘。
3.取上層水相于一新的離心管(取400gl),按每mlTrizol液加0.5ml異
丙醇的比例加入異丙醇,室溫放置10分鐘,12000rpm離心10分鐘。(此
步中注意:不要吸取任何中間層物質(zhì),寧缺勿爛)
4.小心移去上清液,防止RNA沉淀丟失。,按每mlTrizol液加入至少
1ml的比例加入75%乙醇,渦旋混勻,室溫下8000rpm,室溫離心10分
鐘。
5.小心棄去上清液,然后室溫或真空干燥5-10分鐘,注意不要干燥過(guò)分,
否則會(huì)降低RNA的
溶解度。然后將RNA沉淀用30glDEPC-H2O溶解。如發(fā)現(xiàn)沉淀難溶,可
5513-60團(tuán)水溶10分鐘。
RNA可進(jìn)行mRNA分離,或貯存于70%乙醇并保存于-70團(tuán)。
五、注意事項(xiàng)
1.操作者應(yīng)戴手套與口罩,當(dāng)手套接觸了皮膚或不潔的儀器設(shè)備后,應(yīng)及
時(shí)更換。
2.提取RNA的所有試劑與玻璃器皿均應(yīng)用0.1%的DEPC水進(jìn)行配制與
處理,并在處理完后通
過(guò)高壓滅菌以除去殘留的DEPCo玻璃器皿經(jīng)高壓消毒后并不能有效滅活
RNA酶的活性,還應(yīng)置
250-300回烘烤4ho
3.最好選用新的一次性塑料用品,使用前高壓蒸汽消毒,并于常溫下烤干
備用。
4.使用液氮時(shí)要特別小心地防護(hù),避免吸人液氮汽,避免直接的凍傷。
5.在總RNA制備過(guò)程中,移取含RNA的水相時(shí),為減少界面DNA的
污染,不要吸取靠近界面的下層水相。
問(wèn)題和處理方法:
第26頁(yè)共46頁(yè)
A.樣品裂解或勻漿處理不徹底
低得率
B.最后得到的RNA沉淀未完全溶解
A.檢測(cè)吸光度時(shí),RNA樣品不是溶于TE,而是溶于水。低離子濃度
和低pH條件下,A280值會(huì)較高。
A26O/A28O<1.B.樣品勻漿時(shí)加的試劑量太少。
65C.勻漿后樣品未在室溫放置5分鐘。
D.水相中混有有機(jī)相。
E.最后得到的RNA沉淀未完全溶解。
A.組織取出后沒(méi)有馬上處理或冷凍
B.樣品或提取的RNA沉淀保存于-5--20團(tuán),未在-60--7013保存。
RNA降解
C.細(xì)胞在胰酶處理時(shí)被破壞。
D.溶液或離心管未經(jīng)RNase去除處理。
4.9.實(shí)驗(yàn)五核酸的純度、濃度的測(cè)定-紫外分光光度法
一、實(shí)驗(yàn)原理
核酸具有吸收紫外光線(xiàn)的能力,在波長(zhǎng)為260nm的條件下具吸收峰值,
而蛋白質(zhì)在280nm時(shí)具有吸收峰值。根據(jù)經(jīng)驗(yàn)數(shù)據(jù),純核酸溶液A260=1.7-
2.0時(shí),認(rèn)為已達(dá)到所要求的純度。在樣品中含有蛋白質(zhì)等雜質(zhì)時(shí),會(huì)使
A260/A280的比值下降。用此法測(cè)定時(shí),只能區(qū)別核酸和蛋白質(zhì),而無(wú)法區(qū)別
質(zhì)粒DNA與染色體DNA及RNAo
計(jì)算如下
DNA濃度(|ig/ml)=50pg/mlxA260x
稀釋倍數(shù)/1000RNA濃度(gg/ml)
=40pig/mlxA260x稀釋倍數(shù)/1000
二、實(shí)驗(yàn)?zāi)康恼莆蘸怂岬募兌取舛?/p>
測(cè)定的原理和方法
三、實(shí)驗(yàn)材料待
第27頁(yè)共46頁(yè)
測(cè)核酸樣品、TE
或雙蒸水四、操作
步驟
1.吸取50-100^1DNA樣品或RNA樣品,加雙蒸水或TE至3ml混勻
后,轉(zhuǎn)入紫外分光光度計(jì)的石英比色杯中。
2.紫外分光光度計(jì)先用1ml雙蒸水或TE校正零點(diǎn)。
3.在260nm和280nm分別讀出光密度值,按上述公式進(jìn)行計(jì)算含量。
五、注意事項(xiàng)
L若為DNA樣品,A260/A280比值大于1.8,說(shuō)明仍存在RNA,可用
RNA酶處理樣品;小于
1.6,說(shuō)明樣品中存在蛋白質(zhì),應(yīng)用酚/氯仿抽提一次。
2.若為RNA樣品,A260/A280比值小于2.0,也應(yīng)考慮蛋白質(zhì)污染,再用酚
/氯仿抽提。
4.10.實(shí)驗(yàn)六WNA的限制性?xún)?nèi)切酶反應(yīng)
一、實(shí)驗(yàn)原理
團(tuán)型限制性?xún)?nèi)切酶是能特異性識(shí)別雙鏈DNA分子中特定堿基順序的核酸水
解酶。其識(shí)別序列通
常為4-6bp的回文結(jié)構(gòu),并在識(shí)別順序內(nèi)進(jìn)行切割,產(chǎn)生特異的DNA片段,
從而可用于分析和重建
DNAo
本實(shí)驗(yàn)用國(guó)型酶Hind0(特異識(shí)別序列5'-A]AGCTT-3')對(duì)入DNA進(jìn)
行酶切觀(guān)察限制性?xún)?nèi)切酶的特定切割作用。
二、實(shí)驗(yàn)?zāi)康?/p>
1.掌握限制性?xún)?nèi)切酶的工作原理。
2.理解標(biāo)準(zhǔn)酶解體系的概念、組成。
三、實(shí)驗(yàn)材料
LlOxBufferE反應(yīng)緩沖液:6mmol/LTris.ClpH7.5
第28頁(yè)共46頁(yè)
6mmol/LMgCb
lOOmmol/LNaCl
Immol/LDTT
識(shí)別序列5'...AjAGCT
2.Hind0(lu/pil)T...3'
3'...TTCGAJA...5'
3ADNA(0.5u
g/p.1)四、操作
步驟
1.建立酶解反應(yīng)體系(20gl):
ddH2O14
uL
lOxBufferE反應(yīng)緩沖液
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