1、 . 本科畢業論文（設計）( 201屆 )題 目：多種干貨多糖含量測定與抗氧化性的研究學 院：專 業：學生：學號：指導教師：職稱（學位）：完成時間：2014年 5 月 10 日成 績：學院教務處制15 / 22學位論文原創性聲明茲呈交的學位論文，是本人在指導老師指導下獨立完成的研究成果。本人在論文寫作中參考的其他個人或集體的研究成果，均在文中以明確方式標明。本人依法享有和承擔由此論文而產生的權利和責任。聲明人（簽名）：年 月 日目 錄中文摘要1英文摘要2引言3 1 材料與方法.4 1.1 實驗材料與試劑.4 1.2 實驗器材.4 1.3 實驗方法.4 1.3.1 粗多糖提取的方法.4 1.3.

2、2 標準曲線的制定.4 1.3.3 多糖含量的測定方法.5 1.3.4 多糖對羥基自由基（OH）消除作用的測定方法.5 1.3.5 多糖對超氧自由基（O2-）消除作用的測定方法.62 結果與分析.6 2.1 干木耳粗多糖提取的條件優化與含量的測定.6 2.1.1 浸提時間對多糖提取的影響.6 2.1.2 浸提溫度對多糖提取的影響.6 2.1.3 浸提料液比對多糖提取的影響.7 2.1.4 提取工藝的優化.7 2.1.5 標準曲線的測定和回歸方程的建立.8 2.1.6 干木耳的粗多糖的含量測定.8 2.2 干枸杞的粗多糖的含量測定.9 2.3 干海帶的粗多糖的含量測定.9 2.4 干百合的粗多糖

3、的含量測定. .9 2.5 干銀耳的粗多糖的含量測定.9 2.6 干紅棗的粗多糖的含量測定.9 2.7 干茶樹菇的粗多糖的含量測定.10 2.8 多糖對羥基自由基（OH）的清除作用.10 2.8.1 茶樹菇多糖.10 2.8.2 干百合菇多糖.11 2.8.3 枸杞多糖.11 2.9 多糖對超氧自由基（O2-）消除作用.12 2.9.1 茶樹菇多糖.12 2.9.2 干百合多糖.12 2.9.3 枸杞多糖.133 結論.13 3.1 干木耳多糖提取的優化.13 3.2 多糖的含量.13 3.3 抗氧化活性.134 未來展望.14參考文獻.15致.16多種干貨多糖含量測定與抗氧化性的研究化學化工

4、學院 化本專業 晨 指導老師：娜（講師） 摘要：本文選用熱水浸提法對干木耳的多糖進行了粗提取，同時研究了不同提取料液比、時間、溫度對干木耳多糖提取率的影響。運用了單因素變量法和正交實驗組合得出了提取干木耳多糖的最優的條件：浸提溫度90C，浸提時間3.5h，浸提料液比1:40，提取率為17.02%。并且用同樣的方法提取多種不同干貨的多糖，硫酸-蒽酮法測定了各自多糖含量。選取的枸杞、茶樹菇、百合三種干貨在不同的抗氧化體系中均有抗氧化性，多糖的濃度與抗氧化能力成一定的劑量-效性關系。以維生素C為參照、同濃度條件下：茶樹菇的抗氧化能力比維生素C強，百合的抗氧化能力和維生素C差不多，枸杞的抗氧化能力比維

5、生素C低。 關鍵詞：熱水浸提；提取；含量測定；抗氧化性Research a variety of dry polysaccharide content and antioxidant activity College of Chemistry and Chemical Engineering10 Chemical EducationChenChenDoctor:Zhang Na(Lecturer)Abstract:In this paper, the hot water extraction method was used to crudely extract polysaccharide o

6、f dry black fungus, and the effects of different ratios of solid to liquid, time and temperature on the extraction rate were also studied. By applying single factor analysis and orthogonal optimization experiment, the results of the optimum extraction conditions were obtained as follows: extraction

7、temperature(90C), extraction time(3.5h), ratio of solidtoliquid(1:40), and extraction rate (17.02%). In the same way, we extracted polysaccharide of various kinds of dry goods and also identified each polysaccharide content with the anthrone-sulfuric acid method. The selected dry goods as medlar, ag

8、rocybe cylindracea and lily all have inoxidizability in different antioxidant systems. There are some dose-effect relationships between the concentration of polysaccharide and its antioxidant capacity. Under the same concentration conditions, compared with Vitamin C, it can be obtained that the anti

9、oxidant capacity of agrocybe cylindracea is better than that of Vitamin C, the antioxidant capacity of lily is almost the same as Vitamin C, and the antioxidant capacity of medlar is worse than that of Vitamin C.Keywords: Hot water extraction; extraction; determination; antioxidant activity引言 干貨是指去除

10、了水分的食品。通常用晾曬、風干等方法來處理。中國是一個飲食大國，干貨市場隨處可見，它已經成為了我們生活中必不可少的食物之一。干貨中含有蛋白質、植酸、多糖等營養成分，經過大量研究證明、這些都具有很高的營養價值。本文主要是針對干貨中的多糖進行提取并且研究它的抗氧化活性。 多糖是由大于10個單糖失水、縮合而組成的高分子碳水化合物。實質是一種糖鏈，由糖苷鍵結合而成。從20世紀下半葉以來，人們發現多糖具有很多的功能特點和生物活性。在臨床方面有抗病毒、抗癌、免疫調節、降血糖、治療等作用；在生活中也有美容的功能；在工業中可用于乳化1-3。 近年來對多糖的提取優化工藝研究比較多，關于多糖的含量測定和它的抗氧化

11、性質研究還是相對較少的。經過科學研究顯示，大多數疾病、衰老、癌癥的發生都與過量的自由基有關系。多糖的抗氧化活性可以通過消除自由基，使這些危害被有效的克服。所以抗氧化是化妝品、醫學治療等方面的重點研發方向之一。 本文中選用了七種干貨，選其中一種干貨木耳，采用熱水浸提法，進行浸提條件的優化工藝的研究4。再用硫酸-蒽酮法測得它的多糖含量（因為糖類在比較高的溫度下能被濃硫酸作用而脫水為糖醛，糖醛然后與蒽酮脫水縮合生成的這種物質是呈藍綠色的糖醛衍生物，且在625nm處有最大吸收，可溶性糖溶液與它顏色深淺成正比）5。使用同一種方法對其他干貨多糖進行了提取與含量測定。再從中選取三種干貨多糖在不同的抗氧化性體

12、系中進行研究，以維生素C為參照，比較他們的抗氧化能力。 此次實驗中選取的七種干貨：木耳，真菌類的一種。種子實體杯狀、耳朵狀、葉狀，邊緣似波浪形，較薄，色澤黑，可以用于防治缺鐵性貧血、延緩衰老。枸杞，味道有點甜，可以明亮眼睛，滋養肝和腎。百合，屬于多年生草本球根植物，基部稍寬，頂部尖，略向彎，無嗅味苦?？梢杂脕斫祷?、潤肺、安神等。海帶，一種大型海藻類的植物之一。曬干后為黑色，含有豐富的礦物質、中等的蛋白質和多糖。銀耳，真菌界的銀耳目銀耳屬，潔白半透明，曬干后質地硬。有補腎美容等作用。紅棗，植物界棗屬，含有豐富的維生素，味甘，有補血抗衰老等功效。茶樹菇，是一種口感極好，富有很高營養價值的食用菌類。

13、曬干后，顏色黃褐，有淺皺紋。 選取的這七種干貨，產量高，價格適中，取材方便，營養價值高，功效多，都有很好的開發前景。1 材料與方法1.1 實驗材料與試劑 木耳、枸杞、干海帶、干百合、干銀耳、干紅棗、干茶樹菇，均購買于市大潤發超市。取一定量的干貨樣品于真空烘箱中低溫烘干，用粉碎機粉碎，用40目篩篩取，留著備用。 無水乙醇，鄰苯三酚，雙氧水，鄰菲羅啉，磷酸鹽-生理鹽水緩沖溶液（用分析天平稱7.9000g氯化鈉，0.2000g氯化鉀，0.2400g磷酸二氫鉀和1.8000g磷酸氫二鉀，溶于800mL蒸餾水中，用鹽酸調節溶液pH為7.4，然后加蒸餾水定容到1L），硫酸亞鐵，葡萄糖為國產分析純，蒸餾水，

14、維生素C溶液，蒽酮-硫酸溶液（稱量0.2g的蒽酮，加入100mL、質量分數98%的濃硫酸溶液，搖勻，放在棕色試劑瓶中，低溫保存），無水丙酮，Tris-HCl（pH=8.20，0.05mol/L）緩沖溶液（稱取25gTris試劑溶于蒸餾水中，加8mL濃鹽酸溶液，然后定容至1L，高壓、高溫滅菌后室溫下保存）。 1.2 實驗器材 RE-52AA 旋轉蒸發器（亞榮生化儀器廠）、AL104電子分析天平(瑞士梅特勒托利多儀器）、UV-1100紫外-可見分光光度計（美普達儀器）、離心機、SHA-水浴恒溫振蕩器（省金壇市醫療器械）、PHS-3C型pH計（天達儀器）、真空抽濾機、DF-101干燥箱、錐形瓶、吸量

15、管(1mL、2mL、5mL）、洗耳球、比色管、容量瓶。 1.3 實驗方法 1.3.1 粗多糖提取的方法 多糖的提取一般有超微波輔助法、微波輔助法、酶法、熱水浸提法。本文所用的是熱水浸提法。它的原理是在熱力作用下，細胞的質壁分離。水溶劑滲入到細胞質、細胞壁中，溶解了液泡里的物質，并且通過細胞壁擴散到外部。 取一定量預處理過的樣品，按1:10的料液比加入95%（V/V）的乙醇，低溫浸泡12h。過濾，濾渣按一定的料液比加入蒸餾水，熱水浴中保溫一定時間。減壓抽濾得到濾液，濾渣二次浸提，合并濾液，用旋轉蒸發儀濃縮至原來體積的1/4，加入3倍于濃縮液的95%（V/V)乙醇，3下放置過夜，密封好，當有粒狀沉

16、淀和絮狀膠狀物產生后，用離心機以30分鐘、3000r/min去上清液，沉淀復溶再離心、抽濾后，用無水丙酮、乙醇多次洗滌，干燥得到樣品的粗多糖提取物，備用。多糖提取率=多糖質量/樣品質量100% 1.3.2 標準曲線的繪制6 先打開紫外分光光度計進行預熱。 清洗七個比色管，干燥編號備用。然后用分析天平稱取0.1020g分析純葡萄糖，蒸餾水溶解后，完全轉移到100mL容量瓶進行定容，得0.1020mg/mL的葡萄糖標準溶液。然后用1mL的吸量管分別移取0.10、0.20、0.40、0.60、0.80、1.00mL的葡萄糖標準溶液于干燥的比色管中，再用2mL的吸量管分別移取0.90、0.80、0.6

17、0、0.40、0.20、0.00mL的蒸餾水到比色管中，補至1.00mL。將七個比色管放在冰水浴中，用5mL的吸量管迅速移取4.00mL的蒽酮-硫酸溶液分別加入比色管，搖勻。然后將7個比色管放在沸水浴中加熱10分鐘后，取出來，放在盛有自來水的大燒杯中冷卻至室溫。用紫外分光光度計從低濃度到高濃度在625nm波長下，分別測定它們的吸光度。記下數據，以吸光度為縱坐標、葡萄糖濃度為橫坐標，用excel繪制葡萄糖溶液的標準曲線，得到相關系數和回歸方程。1.3.3 多糖含量的測定方法 用電子天平稱取樣品粗多糖提取物0.1000g，三份，蒸餾水溶解后，完全轉移到100mL容量瓶中并且搖勻定容。移取0.40m

18、L的稀釋液于25mL的比色管中，再移取0.60mL蒸餾水補齊到1.00mL,將比色管放入冰水浴中，迅速加4.00mL的蒽酮-硫酸溶液，搖勻。然后放在沸水浴中加熱10分鐘，取出，放在乘有自來水的大燒杯中冷卻至室溫。以蒸餾水為參比，迅速用紫外分光光度計在625nm的波長下，測得它的吸光度，然后代入回歸方程求出多糖的濃度，并且算出多糖在樣品粗提取物中的含量。 1.3.4 多糖對羥基自由基(OH）消除作用的測定方法7 本文采用的是用Fenton法反應形成羥基自由基的體系。Fe2+ 與H2O2 在Fenton反應中產生羥基自由基的方程式如下：=向該反應體系中加入鄰菲羅啉，由于羥基自由基活性很高，能夠很有

19、效的被鄰菲羅啉所結合，產生有色物質。有色物質在510nm處有最大吸收。當加入多糖溶液后，多糖溶液就會與羥基自由基結合，減少了鄰菲羅啉與羥基自由基結合而生成的有色物質，減弱了在510nm處的吸光值。通過測定添加了多糖溶液的體系的吸光度來判斷它的消除能力。方法如下： 首先用分析天平精確稱量提取的樣品粗多糖沉淀1.0000g，用蒸餾水溶解后，在100mL的容量瓶中定容，配成濃度為1.000mg/mL的母液，取母液進行稀釋至濃度為0.20、0.40、0.60、0.80、1.00mg/mL。配制維生素C溶液用同樣的方法。 取6支干燥且干凈的比色管，依次編號、分別向里面加入1.5mL的鄰菲羅啉溶液，磷酸鹽

20、-生理鹽水（pH=7.4）緩沖溶液3.80mL，和0.00、0.20、0.40、0.60、0.80、1.00mg/mL的多糖溶液0.50mL混勻（注：1號為空白對照，用蒸餾水代替多糖溶液）。再加0.75mmol/mL硫酸亞鐵溶液1.50mL，迅速搖勻，再加0.01%的過氧化氫溶液1.00mL，將五支比色管放在38的熱水浴中反應1小時，然后迅速測定各管在510nm下的吸光度。再將維生素C藥片研磨，稱取，配制同濃度的維生素C溶液作對比。清除率的計算：OH清除率=(A0-A樣品)/A0 100%1.3.5 多糖對超氧自由基（O2-）消除作用的測定方法8 對超氧陰離子清除采用的是鄰苯三酚自氧化法。鄰苯

21、三酚可以在堿性條件下發生自身氧化生成超氧自由基（O2-）、以與紅色中間物質。超氧自由基能夠加速鄰苯三酚的氧化速率，如果有清除劑的加入，會消除O2- ，減少了紅色中間產物的積累，降低了在310nm處的吸光度。通過測定加入多糖溶液的體系的吸光度來判斷它的消除能力。方法如下： 取6支干燥且干凈的比色管，依次編號、分別向里面加入2.20mL蒸餾水、Tris-HCl（pH=8.20，0.05mol/L）緩沖溶液6.00mL，放在25的熱水浴中25分鐘，然后向比色管中依次加入0.00、0.20、0.40、0.60、0.80、1.00mg/mL多糖溶液0.50mL（注：1號管為空白對照，用蒸餾水代替多糖溶液

22、）。迅速加入在25熱水浴中預熱20分鐘的鄰苯三酚（0.7mmol/L 由10mmol/L鹽酸配制）1.00mL，搖勻。放置在20水浴槽中反應5分鐘，最后加入1.00mL的HCL（8mL/L）溶液結束反應。將各管在310nm處測定它的吸光度，再將維生素C藥片研磨，稱取，配制同濃度的維生素C溶液作對比。清除率計算：O2- 清除率=(A0-A樣品)/A0 100%2 結果與分析 2.1干木耳粗多糖提取的條件優化與含量的測定多糖在熱水提取的過程中，有許多因素會影響多糖提取率。本文針對浸提料液比、溫度、時間這三個條件進行探究9。 2.1.1 浸提時間對多糖提取的影響 固定溫度為85、料液比1:30不變。

23、時間為1、1.5、2、2.5、3、3.5、4、4.5h，根據1.3.1方法分別測定他們的提取率，結果如下：表2-1 浸提時間對多糖提取率的影響時間/h11.52 2.533.544.5提取率/%4.526.439.2110.8912.3614.1513.3211.96 由結果得出，隨著時間的增大，提取率先增大后減小。當浸提時間為3.5h，提取率最大，繼續增加時間，提取率開始下降。 2.1.2 浸提溫度對多糖提取的影響 固定浸提時間為3.5h，料液比1:30不變。溫度為50、60、70、75、80、85、90、95。根據1.3.1方法分別測定他們的提取率，結果如下：表2-2 浸提溫度對多糖提取率

24、的影響溫度/5060707580859095提取率/%3.568.129.1010.3513.4514.9616.5116.79 由上表中數據表明，隨著溫度的升高，多糖的提取率也會隨之增加。但是過高溫度會分解多糖，多糖的活性受到影響，所以我們選擇90作為我們的浸提溫度。 2.1.3 浸提料液比對多糖提取率的影響 由表2-1、表2-2可知，固定浸提時間為3.5h，浸提溫度為90不變。料液比分別1:20、1:30、1:40、1:50、1:60、1:70。根據1.3.1方法分別測定他們的提取率，結果如下：表2-3 料液比對多糖提取率的影響料液比1:201:301;40 1:501:601:70提取率

25、/%未完全浸沒16.5317.2616.0815.9414.55 由表三中的數據可看出，隨料液比的增加，多糖的提取率先增加后減小，當料液比為1:40時，提取率最大。 2.1.4 提取工藝的優化 根據單因素實驗我們分別得出了最佳浸提時間、溫度和料液比。數據顯示也看出了這三個因素對提取率的影響很大。為了進一步優化木耳多糖提取工藝，我們采用了L9（33）正交實驗法10。 表2-4 因素水平水平 A時間/h B料液比 C溫度123330703.54080307090表2-5 正交實驗結果試驗號列號ABC木耳多糖提取率/%11118.46212212.65313314.80421213.42522317

26、.2662319.01731315.7583219.82933212.04K111.97012.5439.097K213.23013.24312.730K312.53711.95015.973極差1.2601.2936.840 從以上的正交實驗、極差分析結果顯示：影響木耳多糖提取率的三個因素的大小排序是浸提溫度料液比浸提時間。最佳的提取工藝條件是：浸提溫度90，浸提時間3.5h，料液比1:40。 2.1.5 標準曲線的測定和回歸方程的建立 根據3.1.2的方法測定出的吸光值擬合的葡萄糖標準曲線如下： 圖1 由圖1可知，葡萄糖溶液的標準曲線的方程是Y=9.9712X+0.0090，相關系數是0.

27、9880。 2.1.6 干木耳多糖含量的測定 根據1.3.3方法測定木耳多糖含量，最佳的提取條件是：浸提溫度90，浸提時間3.5h，料液比1:40。表2-6 測得干木耳的粗多糖的含量多糖粗提取物質量/g多糖含量/%平均值/%RSD值/%0.113550.4350.320.760.109850.650.111149.89 2.2 干枸杞的粗多糖的含量測定 參考文獻得最佳提取條件：料液比1:30，溫度90，浸提時間2h11表2-7 測得干枸杞的粗多糖的含量多糖粗提取物質量/g多糖含量/%平均值/%RSD值/%0.103215.7715.820.090.101515.860.102115.82 2.

28、3 干海帶的粗多糖的含量測定 參考文獻得最佳提取條件：料液比1:25，溫度90，浸提時間5h12表2-8 測得干海帶的粗多糖的含量多糖粗提取物質量/g多糖含量/%平均值/%RSD值/%0.101943.6243.540.730.1022 43.140.1024 43.872.4 干百合的粗多糖的含量測定 參考文獻得最佳提取條件：料液比1:30，溫度80，浸提時間2h13表2-9 測得干百合的粗多糖的含量多糖粗提取物質量/g多糖含量/%平均值/%RSD值/%0.102352.3752.930.950.102853.110.101753.322.5 干銀耳的粗多糖的含量測定 參考文獻得最佳提取條件

29、：料液比1:20，溫度80，浸提時間6h14表2-10 測得干銀耳的粗多糖的含量多糖粗提取物質量/g多糖含量/%平均值/%RSD值/%0.100550.0349.950.180.101449.970.102149.85 2.6 干紅棗的粗多糖的含量測定 參考文獻得最佳提取條件：料液比1:40，溫度100，浸提時間1h15表2-11 測得干紅棗的粗多糖的含量多糖粗提取物質量/g多糖含量/%平均值/%RSD值/%0.103379.9880.300.880.102580.860.103480.05 2.7 干茶樹菇的粗多糖的含量測定 參考文獻得最佳提取條件：料液比1:20，溫度90，浸提時間4h16

30、表2-12 測得干茶樹菇的粗多糖的含量多糖粗提取物質量/g多糖含量/%平均值/%RSD值/%0.100740.7840.890.940.100940.520.100241.46 2.8 多糖對羥基自由基(OH）消除作用 羥基自由基由于具有很高的氧化電位（2.80V），所以氧化能力很強，對生物體的組織有很強的危害。它可以降解DNA，而且膜系統也會被誘導產生損傷，造成膜通透性增加，從而引起膜外物質的流、泄漏，出現線粒體膨脹和紅細胞溶血等現象。也會使蛋白質、氨基酸、核酸、脂類和糖類發生氧化，造成破壞損傷。經研究發現，如果加羥基自由基的消除劑后，影響會明顯減小。 2.8.1 茶樹菇多糖 根據1.3.4

31、方法，不同濃度的茶樹菇多糖，對照維生素C對羥基自由基的作用， 結果如圖表2： 圖2 維生素C和茶樹菇多糖對OH的清除作用 圖2顯示，茶樹菇多糖對羥基自由基具有清除能力，且和維生素C一樣隨著濃度增加清除作用增強。當茶樹菇多糖溶液濃度為1.0mg/mL 時，它的清除率將近90%。并且可以看出在試液濃度一樣的情況下，茶樹菇多糖對羥基自由基的清除能力比維生素C的強。 2.8.2 干百合多糖 根據1.3.4方法，不同濃度的百合多糖，對照維生素C對羥基自由基的作用，結果如圖3：圖3 維生素C和百合多糖對OH的清除率 圖3顯示，百合多糖具有清除羥基自由基的能力，并且和維生素C一樣，隨著濃度的增加，清除能力也

32、相應增大。在0.4mg/mL以下時，它的清除作用比維生素C低，但是在0.61.0mg/mL時，百合多糖的清除作用略大于維生素C，并且在1.0mg/mL的清除率是64.8%，具有比較強的清除作用。維生素C的清除率是72.3%?？傮w來說，兩者的清除作用相差不大。2.8.3 枸杞多糖 根據1.3.4方法，不同濃度的枸杞多糖，對照維生素C對羥基自由基的清除作用，結果如圖4：圖4 維生素C和枸杞多糖對OH的清除率 由圖表顯示，枸杞多糖對羥基自由基具有清除作用，并且隨濃度的增加，清除作用也相應增加。并且當枸杞多糖濃度為1.0mg/mL時，它的清除率有76.7%。說明枸杞多糖對羥基自由基的清除作用比維生素C

33、稍高。2.9 多糖對超氧自由基（O2-）消除作用 2.9.1 茶樹菇多糖 根據1.3.5的方法，不同濃度茶樹菇多糖，對照維生素C溶液對超氧陰離子的清除作用，如圖表:圖5 維生素C茶樹菇多糖對O2-的清除率 由圖5顯示，茶樹菇多糖對超氧陰離子具有清除作用，且隨著濃度的增加清除能力增加。當茶樹菇多糖濃度為0.2mg/mL時，它的清除率就達到了49.6%。與同濃度的維生素C濃度比強很多。 2.9.2 干百合多糖根據1.3.5的方法，不同濃度干百合多糖，對照維生素C溶液對超氧陰離子的清除作用，如圖表:圖6 維生素C和百合多糖對O2-的清除率 由圖6顯示，百合多糖對超氧陰離子具有清除作用，并且隨著濃度的

34、增加，清除作用也逐漸增大。但是在0.4mg/mL濃度下，百合多糖的清除率大于維生素C溶液，但大于0.4mg/mL時，百合多糖的清除作用略低于維生素C。當達到1.0mg/mL時，它對超氧陰離子的清除率為45.2%，維生素C的清除率為64.9%。總體說明，百合多糖對O2-具有一定的清除能力，且稍低于維生素C溶液。 2.9.3 枸杞多糖 根據1.3.5的方法，不同濃度枸杞多糖，對照維生素C溶液對超氧陰離子的清除作用，如圖表:圖7 維生素C和枸杞多糖對O2-的清除率 由圖7顯示，枸杞多糖對超氧陰離子具有清除作用，并且隨著濃度的增加，清除作用也逐漸增大。但是在試液濃度為1.0mg/mL時，枸杞多糖的清除

35、率最高才達到28.9%。明顯要比維生素C的清除能力低很多。3 結論 3.1 干木耳多糖提取的優化用熱水浸提法進行多糖的提取，預先用95%乙醇浸泡，是為了除去樣品中的低聚糖、單糖等一些干擾成分。選取干木耳，采用單因素實驗和正交實驗對影響多糖提取率的浸提時間、溫度、料液比進行探究。確定了干木耳多糖提取的最佳條件是:浸提溫度90，浸提時間3.5h ，料液比1:40。提取率17.26%。 3.2 多糖的含量 采用蒽酮-硫酸法測出0.1000g粗多糖產品中，木耳多糖含量是50.32%，是枸杞多糖含量是15.82%，海帶多糖含量43.54%，干百合多糖含量是52.93%，銀耳多糖含量49.95%，紅棗多糖

36、含量80.30%，茶樹菇多糖含量40.89%。 3.3 抗氧化活性 選取了茶樹菇多糖、百合多糖、枸杞多糖在超氧陰離子和羥基自由基兩個不同的氧化體系中，以維生素C作參照，研究了這三種干貨多糖的抗氧化抗氧化活性。根據抗氧化活性的試驗結果顯示，這三種干貨多糖在不同的氧化體系中的抗氧化活性都是隨著濃度的增加而增大的。在試驗濃度的圍中，和同濃度的維生素C比較，茶樹菇對羥基自由基和超氧陰離子的清除作用都很強，并且均大于維生素C的抗氧化活性，百合多糖對羥基自由基的清除作用和維生素C差不多，但是對超氧陰離子的清除作用稍低于維生素C。枸杞多糖對羥基自由基的清除效果大于維生素C，但是對超氧陰離子的清除作用低于維生

37、素C。 4 未來展望近年來，有關多糖的研究國外都有許多，但是關于多糖的抗氧化活性的應用還只是處于初級階段?？寡趸钚栽谌祟惐＝　⒚廊荨⑨t學治療上仍然有很大的潛在價值。關于這方面研究也已經得到了越來越多人的重視和參與。本文并沒有對多糖的分子結構和生物活性的結構效應關系進行分析探究，對于多糖抗氧化性的研究結果也并不能代表藥物在身體的清除效果，但對于大面積離體的藥物抗氧化活性的選擇還是有一定作用和價值，同時也會為進一步研究提供有效依據。抗氧化活性的研究在未來一定會出現新的突破。新穎的設計思路在當今社會層出不窮，創新的設計帶來的必定又是另一番全新的景象，伴隨著這樣的進展，以多糖抗氧化活性為中心的衍射分支必然也會推動主體的發展，必將在未來社會的各個領域取得巨大的進展。參考文獻1胡敏敏, 蔡寶昌, 志杰等. 百合多糖的藥學研究J.中藥新藥與臨床藥理, 2007,18（2）: 101-102.2Seon-Joo Yoon,Myeong-Ae Yu.Thenontoxic mushroom Auricularia auricula contains aploysaccharide with anticoagulant activity mediated by antithrombinJ. Thrombosis Research,2003,112:151-158.3Liu F,Fung M