1、轉錄組學主要技術及其應用研究姓名：梁 迪 專業：微生物學年級：2013 學號：3130179 二 零 一 四 年 六 月 十 五 日轉錄學主要技術及其應用研究摘 要：轉錄組(transcriptome)是特定組織或細胞在某一發育階段或功能狀態下轉錄出來的所有RNA的集合。轉錄組學研究能夠從整體水平研究基因功能以及基因結構，揭示特定生物學過程以及疾病發生過程中的分子機理。目前，轉錄組學研究技術主要包括兩種：基于雜交技術的微陣列技術（microarray)和基于測序技術的轉錄組測序技術，包括表達序列標簽技術（Expression Sequence Tags Technology，EST）、基因表達

2、系列分析技術（Serial analysis of gene expression，SAGE）、大規模平行測序技術（Massively parallel signature sequencing，MPSS）、以及RNA 測序技術（RNA sequencing，RNA-seq）。文章主要介紹了以上轉錄組學主要研究技術的原理、技術特點及其應用，并就這些技術面臨的挑戰和未來發展前景進行了討論，為其今后的研究與應用提供參考。關鍵詞：轉錄組學；微陣列技術；轉錄組測序技術；應用Study on the main technologies of transcriptomics and their appli

3、cationAbstract: The transcriptome is the complete set of transcripts for certain type of cells or tissues in a specific developmental stage or physiological condition. Transcriptome analysis can provide a comprehensive understanding of molecularmechanisms involved in specific biological processes an

4、d diseases from the information on gene structure and function. Currently, transcriptomics technology mainly includes microarry -based on hybridization technology and transcriptome sequencing-based on sequencing technology, involving Expression sequence tags technology, Serial analysis of gene

5、expression, Massively parallel signature sequencing and RNA sequencing. The detailed principles, technical characteristics and applications of the main transcriptomics technologies are reviewed here, and the challenges and application potentials of these technologies in the future are also discussed

6、. This will present the useful information for other researchers.Keywords: transcriptomics ; microarray ; transcriptome sequencing; application 隨著后基因組時代的到來，轉錄組學、蛋白質組學、代謝組學等各種組學技術相繼出現，其中轉錄組學是率先發展起來以及應用最廣泛的技術1。1 轉錄組和轉錄組學 轉錄組概念是最先由Veclalesuc和Kinzler等人于1997年提出2。轉錄組(transcriptome)廣義上是指某個組織或細胞在特定生長階段或生長條件

7、所轉錄出來的RNA總和，包括編碼蛋白質的mRNA和各種非編碼RNA，如rRNA、tRNA、snoRNA、snRNA、microRNA及其他非編碼RNA等。但狹義上通常僅以 mRNA為研究對象。由轉錄組的定義可見，其包含了特定的時間和空間限定，這與基因組的概念不同。因此，同一組織或細胞在不同生長條件、生長階段，其轉錄組是不同的。通過遺傳學中心法則我們可以知道，遺傳信息的傳遞是以信使 RNA（mRNA）為“橋梁”，從 DNA傳遞到蛋白質。由此可見，轉錄組的研究不僅可以解釋細胞或組織的基因組的功能元件，揭示分子成分，還可以用來認識生物學進程和疾病發生機制3,4。 轉錄組學（transcriptomi

8、cs)是功能基因組學（Functional Genomics)研究的重要組成部分，是一門在整體水平上研究細胞中所有基因轉錄及轉錄調控規律的學科5,6 。隨著人類基因組計劃HGP( Human Genome Project)的完成，科學家也逐漸認識到對基因結構序列的研究僅僅是基因組學研究的一部分，并不能揭示所有的生命奧秘，所以接下來需要解決的問題是：研究這些基因序列的功能、參與的生命過程、表達調控方式，以及這些基因在不同的時空條件下的表達差異等。這些問題都需要功能基因組學技術來解決，而轉錄組學技術是功能基因組學研究的重要組成部分。對基因及其轉錄表達產物功能研究的功能基因組學，將為疾病控制和新藥開

9、發、作物和畜禽品種的改良提供新思路，為人類解決健康問題、食物問題、能源問題和環境問題提供新方法。2 轉錄組學研究的方法在早期，由于測序價格昂貴、基因序列數目有限，轉錄組學研究者只能進行極少數特定基因的結構功能分析和表達研究。最近十幾年，分子生物學技術的快速發展使高通量分析成為可能，這為真正意義上的轉錄組學的研究奠定了基礎。這些高通量研究方法主要可以分為兩類：一類是基于雜交的方法，主要是指微陣列技術（Microarray）；一類是基于測序的方法，這類方法包括表達序列標簽技術（Expression Sequence Tags Technology，EST）、基因表達系列分析技術（Serial an

10、alysis of gene expression，SAGE）、大規模平行測序技術（Massively parallel signature sequencing，MPSS）、RNA 測序技術（RNA sequencing，RNA-seq）。其中，Microarray 和 EST 技術是較早發展起來的先驅技術，SAGE、MPSS 和RNA-seq 是高通量測序條件下的轉錄組學研究方法轉錄組學研究有助于了解特定生命過程中相關基因的整體表達情況，進而從轉錄水平初步揭示該生命過程的代謝網絡及其調控機理。2.1 微陣列技術（Microarry）微陣列技術是分子生物學領域具有里程碑式意義的重大突破，它可

11、以同時測量不同樣本中成千上萬個基因在不同環境和不同狀態下的表達水平。基因表達數據是基于 DNA 微陣列技術而產生的反映基因轉錄產物 mRNA 豐度值的一組數據。數據中蘊含著豐富的基因活動信息，通過對這些數據中所隱含的基因活動信息進行分析，就可以解答一些生物學領域的問題。如基因的表達在不同環境中有哪些差異，基因的表達在特定條件下有哪些變化，基因之間有哪些相關性，以及在不同條件下基因的活動受到哪些影響等等7。2.1.1 原理和方法DNA微陣列基本制作原理為大規模集成電路所控制的機器人在尼龍膜或硅片固相支持物表面，有規律地合成成千上萬個代表不同基因的寡核苷酸“探針”，或液相合成探針后由陣列器(arr

12、ayer)或機器人點樣于固相支持物表面。這些“探針”可與用放射標記物32P或熒光物如熒光素、麗絲胺等標記的目的材中的DNA或cDNA互補核酸序列相結合，通過放射自顯影或激光共聚焦顯微鏡掃描后，對雜交結果進行計算機軟件處理分析，獲得雜交信號的強度及分布模式圖,以此反映目的材料中有關基因表達強弱的表達譜。該技術仍以基因連鎖、連鎖不平衡、限制性長度多態性、可變串聯重復序列及單核苷酸多態性標記等基因定位方法為基礎，采用分子雜交等多種技術方法為手段，進行遺傳作圖,對不同材料中的多個基因表達模式進行平行對比分析，是一種高產出的、新的基因分析方法。以尼龍膜為固相支持物的DNA微陣列和以硅片為固相支持物的DN

13、A芯片，二者在原理上相同,僅在支持物及檢測手段等方面略有不同。在微陣列里最大的一類 DNA microarray根據探針分子的構成又可以分為cDNA微陣列和寡核苷酸微陣列。（1）cDNA微陣列cDNA微陣列是指對各種生物隨機克隆和隨機測序所得的cDNA片段進行歸類，并把每一類cDNA片段的代表克隆(代表一個獨立基因)經過體外擴增，得到大小和序列不同的片段分別經過純化后，利用機械手高速將它們高密度有序地點樣固定在玻片硅晶片或尼龍膜上，從而制備成cDNA微陣列，以此對各基因的表達情況進行同步分析。它的特點是造價低、適用面廣、研制周期短、靈活性高。而缺點是點陣密度相對比較低。同時，cDNA微陣列由于

14、基因長短不一，導致溶解溫度Tm各異，眾多的基因在同一張芯片上雜交，使得雜交條件很難同一，這樣也使得其分辨能力受到限制。（2）寡核苷酸微陣列 寡核苷酸微陣列的主要原理與cDNA微陣列類似，主要是通過堿基互補配對原則進行雜交，來檢測對應片斷是否存在、存在量的多少。它與cDNA芯片的本質差別在于寡核苷酸的探針片斷相對較短(一般是20-70nt的寡聚核苷酸序列)。寡聚核苷酸微陣列的探針經過優化，長度基本一致，并且Tm也相差不大，所以相比較cDNA微陣列它具有以下優點：1.無需擴增，防止擴增失敗影響實驗；2.減少非特異性雜交，能夠有效的區分同源序列的基因；3.雜交溫度均一，提高了雜交效率；4.減少了微陣

15、列片上探針的二級結構。上述特點使得寡核苷酸微陣列的應用日益廣泛。但是當寡核苷酸序列較短時，單一的序列不足以代表整個基因，所以又需要用多段序列，從而提高了制作成本。2.1.2 應用（1）表達差異的研究1995年Schena等用了48個PCR擴增的cDNA探針點制的微陣列片分析了野生型和轉基因的擬南芥中基因表達差異，并與Northern blot作了比較。發現Microarray能夠很好的檢測到基因表達水平上的差異，并且能夠在同一張玻片上使用不同的熒光染料同步進行差異比較。近年來，研究多集中于突變型與野生型、環境脅迫與正常生長型、激素處理與未處理或者不同組織器官之間的比較。Ma等8利用寡核苷酸微陣

16、列研究了玉米3個雄性不育突變體和可育植株花藥4個發育階段的基因表達情況，檢測到了近 9200個正反義轉錄本。通過比較每個突變體與其可育花藥的基因表達差異，篩選到了一大批可能與花藥分化相關的重要轉錄因子和調控因子。Schena等9用人外周血淋巴細胞的cDNA文庫構建一個代表1 046個基因的cDNA微陣列，來檢測體外培養的T細胞對熱休克反應后不同基因表達的差異。發現有5個基因在處理后存在非常明顯的高表達，11個基因中度表達增加和6個基因表達明顯抑制。（2）尋找可能致病基因或疾病相關基因Moch等利用腫瘤微陣列芯片 (5184個cDNA片段)發現了腎細胞癌的腫瘤標志物基因，并與正常細胞進行比較。在

17、532份標本中檢測到與胞漿纖維表達有關的一類基因陽性率為51%-61%，命名為vimentin。追蹤觀察，有Vimentin表達的患者，預后極差。Moch等利用腫瘤微陣列芯片 (5184個cDNA片段)發現了腎細胞癌的腫瘤標志物基因，并與正常細胞進行比較。在532份標本中檢測到與胞漿纖維表達有關的一類基因陽性率為51%-61%，命名為vimentin。（3）基因點突變及多態性檢測現用于治療AIDS的藥物主要是病毒逆轉錄酶RT和蛋白酶PRO的抑制劑，但在用藥312月后常出現耐藥，其原因是rt、pro基因產生一個或多個點突變，rt基因四個常見突變位點是Asp67Asn、Lys70Arg、Thr21

18、5Phe/Tyr和Lys219Gln，四個位點均突變較單一位點突變后對藥物的耐受能力成百倍增加10。如將這些基因突變部位的全部序列構建為DNA芯片，則可快速地檢測待測病人是一個還是多個基因突變，這對指導治療和預后而具有十分重要的意義。Lee等11用含有135 000個探針的DNA微陣列分析了人線粒體基因組DNA多態性變化。該組探針互補于人線粒體基因組全長16.6 kb，將之與不同個體來源的基因組DNA雜交，發現人線粒體基因組存在16 493位TC突變，16 223位CT等多位點突變的DNA多態性特征。2.1.3 不足和展望 DNA微陣列或芯片幾乎可用于所有核酸雜交技術的各個方面,而在同時比較各

19、組織或同一組織在不同狀態下上成千上萬個基因的表達狀況、DNA序列分析等方面具有更大的優越性12. 有人譽贊“微陣列技術鋪平了通往21世紀的醫學之路”13，相信在不久的將來, DNA芯片或微陣列技術將會廣泛應用于基礎及臨床醫學各個方面,而發揮出巨大的經濟、社會效益。隨著微陣列技術的廣泛應用，其內在缺陷也日益暴露出來，成為其發展的瓶頸。第一，技術水平還需要不斷提高。非特異性雜交是微陣列技術的亟待解決的問題，目前，對于這個問題，在實驗中一般采用提高雜交溫度的方法，減少非特異性序列間的相互影響。然而在提高雜交溫度的同時，又很可能造成微陣列靈敏性的降低，使一些應該能夠檢測到的基因表達狀況得不到準確的反映

20、，研究者只能在其中尋找平衡；第二，不同時間不同地點不同平臺的微陣列結果難于比較。操作者本身造成的實驗誤差不可避免，還有樣品DNA在取樣上的誤差，此外，由于實驗儀器和操作平臺的差別，包括不同實驗地點的差別，也導致了相同樣本檢測到的表達基因相差很大14；第三，數據處理難度大。由于微陣列往往集成了成千上萬個基因信息，而且微陣列信號中往往摻雜了大量的背景噪音，最終大量的微陣列數據，如何與生物體內在的因素相結合，所以，微陣列技術中最大的挑戰來源于數據的處理和數據的挖掘。2.2 表達序列標簽技術（EST） 基因表達序列標簽(expressed Sequence tags，ESTs)為長約200-800bp

21、的cDNA部分序列。最早利用EST技術是1991年Adms用人腦組織cDNA得到的EST進行的，當時人類基因組計劃剛剛開始，一些科學家就主張cDNA測序應該先于基因組測序進行，原因是基因組的編碼區代表了基因組絕大部分信息，而且是對我們直接有用的，而編碼區長度只有總基因組長度的3%因此可以用最低的代價、最短的時間獲取最多最有用的信息。有了EST的方法之后，人們可以用比cDNA測序更低的費用而得到等量的信息，因此EST技術已成為目前發現新基因的強有力的信息工具。2.2.1 原理和方法 一個典型的真核生物mRNA分子由5-UTR (5 端轉錄非翻譯區)、ORF (開放閱讀框架)、3-UTR (3 端

22、轉錄非翻譯區)和poly (A )四部分組成，其cDNA具有對應的結構。對于任何一個基因， 其5-UTR 和3-U TR都是特定的，即每條cDNA的5端或3端的有限序列可特異性地代表生物體某種組織在特定的時空條件下的一個表達基因。來自某一組織的足夠數量的ESTs可代表某種組織中基因的表達情況 1 。EST的數目可以反映某個基因的表達情況，一個基因的拷貝數越多，其表達越豐富，測得的相應EST 就越多。所以，通過對生物體EST的分析可以獲得生物體內基因的表達情況和表達豐度。要獲得生物體EST信息，通常應先構建其某個代表性組織的cDNA文庫，然后從中隨機挑取大量克隆，根據載體的通用引物進行測序，一般

23、可以得到其5或3端的200-500 bp的堿基序列，然后將測得的EST序列與網上已有的EST數據庫進行比較，根據同源性大小，可以初步鑒定出哪些EST 代表已知基因，哪些EST代表未知基因，并可以對生物體基因的表達豐度進行分析。以EST 分析基因表達豐度的原理是這樣的：基因x的高水平表達將導致高水平的mRNAx合成，而與mRNA x相對應的cDNA在cDNA文庫中的含量也會很豐富。所以，在對cDNA 文庫中的大量克隆進行隨機測序后，統計與基因x的mRNA相對應的EST數目，就可估計原先mRNA群體中的mRNA x的豐度。而且，以與mRNA x相對應的EST 數目除以所得到的EST 總數，就可得到

24、mRNA x 絕對豐度的估計值。White等人稱這種以cDNA 測序來估計基因表達水平的方法為“電子Northern”(electronic Northern) 或“數字Northern”(digital Northern)。EST構建的技術路線為：提取樣品的總RNA 或帶有polyA的mRNA 構建cDNA文庫，隨機挑取大量克隆進行EST測序對測得的EST序列進行組裝、拼接對網上己有的EST數據庫進行同源性比較確定EST代表的是己知基因還是未知基因對基因進行定位、結構、功能檢測分析。2.2.2 應用（1）基因組物理圖譜的繪制通過已知的EST序列設計引物對基因組BAC文庫進行PCR能產生擴增條

25、帶的那個克隆就是EST在染色體上的位置，這個EST就可以被定位在幾號染色體上，進而亞定位至染色體的某個區段。另外也可以用EST序列提供的探針與基因組BAC文庫雜交，同樣能將某個已知EST在染色體上定位和亞定位。EST與STS（特定序列位點）在基因組作圖上有相同的作用，而且EST位點還直接與一個表達的基因位置相對應。（2）基因的電子克隆電子克隆技術是以算法為核心，以計算機和互聯網為工具，利用現有的表達序列標簽(EST ) 和生物信息數據庫，對其中大量EST進行分類、整合、組裝,直接獲得大片段或cDNA 全長的方法。由于EST 序列是全世界很多實驗室隨機產生的，所以屬于同起來, 通過EST ass

26、embly 程序在EST 庫中搜索與之高度重疊的EST ，并將它們組裝成一致序列(consensus sequence) ，再用它檢索數據庫并逐次放寬匹配條件，重復組裝以獲得盡可能長的或全長cDNA 序列。電子克隆技術的出現，可充分利用現有的信息資源，別是利用其它模式生物的EST信息，快速發現有用基因。但該技術也有局限，如果參數限制條件太低，很可能會得到錯誤結果；而參數條件限制太高，就可能沒有結果。對于所拼接出來的基因還需要從生物學意義上進行分離和鑒定。（3）分離鑒定新基因對某一特異組織或某一生長發育階段的cDNA文庫進行隨機的部分測序，得到大量EST，將這些EST作查詢項在dbEST中進行同

27、源查找，同時將由EST推出的氨基酸序列作為查詢項在PIR中查找類似物，很就可以識別這些基因到底是什么基因；對于那些在以上數據庫中沒有找到類似物的EST，再把它們置于6個ORF下，翻譯出推定的氨基酸序列，將可能的氨基酸序列作為查詢項，在PIR數據庫中查找類似物，果有類似物，就認為這個EST代表著這個蛋白的基因。對于通過EST數據庫和PIR數據庫已識別的EST，還可以通過探針雜交從cDNA文庫中分離我們所感興趣的那個全長cDNA克隆。對于那些在dbEST和PIR數據庫中都沒有類似物的EST，就可能是完全新的基因，需要進一步識別和研究它。(4) 通過EST尋找SSR和SNP分子標記從EST數據庫中篩

28、選SSR和SNP的主要優點在于，這樣篩選出來的SSR和SNP分子標記直接與基因的編碼區相對應，即得到的往往是基因相關標記（gene-associated markers）；另外，從EST中篩選SSR和SNP比從基因組中篩選費用要小得多。篩選的大致步驟為：EST重疊群的組裝；通過對大量重復的EST進行序列比較，識別出候選SSR或SNP；對候選SSR或SNP進行確認。總之，通過對大量EST數據的歸納整理是尋找SSR和SNP以構建高密度遺傳圖譜的最經濟的方法。除了以上用途外，EST還在基因結構分析（內含子、外顯子識別）、基因表達及重組蛋白表達的分析中具有重要作用。（5）RNAi技術的研究結合GATE

29、WAY技術和基因轉化技術用于突變體庫建立的RNAi技術，開發出了pHellsgate 系列載體，將該技術與cDNA文庫構建技術和大規模EST測序技術相結合，使得大規模基因的敲除成為了可能。RNAi 指外源性雙鏈RNA (dsRNA )能抑制細胞內與其序列同源的基因的表達。在進化上，這可能是生物調控基因表達及抵御病毒侵染或轉座子誘導DNA突變的一種共生有的生理機制。該技術最大的優點就是可以獲得大規模的缺失突變體，為基因功能的研究提供了很好的研究工具，同時EST作為序列標簽，可以很好地實現表型相關的基因克隆。2.2.3 不足和展望EST技術己成為一種強有力的工具，幫助人們揭示基因組所包含的信息，使

30、基因組研究進入一個新的階段。隨著“后基因組”時代的到來，生物信息學在基因功能研究中發揮著越來越重要的作用。而EST數據處理和分析是生物信息學分析的核心任務之一，它為新基因的克隆和功能分析提供了新的出發點。EST數據庫為新基因的發現和基因表達研究提供了大量的信息和分析材料，也為DNA分子標記的開發奠定了基礎。但是，目前EST研究還存在許多問題。第一，大量EST序列信息整理的問題。隨著EST數據的不斷增加，利用生物信息學方法建立高通量、自動化的EST數據分析平臺，己成為EST研究急需解決的問題之一；第二，EST文庫中基因表達豐度的問題。植物基因組極其龐大，某一特定組織在特定時期的基因表達頻率各不相

31、同。在獲取有用的、新的EST方面效率較低，人力物力浪費嚴重；第三，就世界范圍來講，如何避免不同研究機構對同一物種進行重復測序，協調好科學家之間的分工，加快植物EST計劃的進程，也是一個需要解決的問題。2.3新一代高通量測序技術2.3.1 原理和方法（1）基因表達系列分析技術(SAGE)SAGE技術是由Velculescu 等人15在 1995 提出，是一種可以定量并同時分析大量轉錄本的方法。1998年，Powell16利用生物素標記的PCR引物合成生物素標記的接頭，并利用鏈霉抗生物素蛋白磁珠綁定接頭，這就有效地去除了一些多余的接頭，從而提高了 SAGE技術分析的效率。SAGE 技術大致理論依據

32、有兩點：第一，來自cDNA特定位置的一段9-13bp 的序列能夠包含有足夠的信息作為確認唯一一種轉錄物的SAGE標簽（9個堿基能夠分辨49個不同轉錄物）；第二，將來自不同 cDNA 的 SAGE 標簽集于同一個克隆中進行測序，就可以獲得連續的短序列SAGE標簽，而這些SAGE標簽可以顯示對應的基因的表達情況。SAGE 技術的主要技術路線：1）將提取的總 RNA，通過生物素標記的oligo（dT）引物合成 cDNA，用錨定酶（一般為 4 堿基的限制性內切酶）酶切，利用鏈霉抗生物素蛋白磁珠收集酶切后cDNA片段的 3部分。2）將收集的 cDNA 片段分為兩等份，分別加上含有標簽酶（一種類限制酶，在

33、距離識別位點大概 20 堿基處酶切 DNA 雙鏈）識別位點的接頭 A 和 B。3）將連有接頭 A 或 B 的 cDNA 短片段分別用標簽酶酶切，再將兩份樣品混合，以連接形成雙標簽，這樣就可以用與接頭 A、B 互補的引物擴增。4）用錨定酶酶切 PCR 富集的產物，得到雙標簽片段，將 10-50個標簽序列置于一個克隆中進行測序。5）對得到的標簽數據進行處理。為了適應不同的試驗需要，目前出現了許多新型 SAGE 技術，如 superSAGE、robust longSAGE、PCR-SAGE、SAR-SAGE等17。雖然 SAGE 技術可以快速、大量分析細胞或組織的基因表達狀態，但不能完全保證檢測到一

34、些低豐度的 mRNA，因而限制該技術的應用。（2）大規模平行測序技術（MPSS）MPSS 技術是由 Brenner 等18在 2000 年建立的以測序為基礎的大規模高通的基因分析技術。其方法的理論基礎19是：一個標簽序列（一般10-20bp）含有其對應 cDNA 的足夠識別信息，將標簽序列與某種長的連續分子連接在一起，可以便于克隆和測序分析，而每個標簽序列的出現頻率又能夠代表其相應基因的表達量。MPSS 技術的方法包括兩個基本過程：第一，cDNA 片段、標簽和微球體的結合；第二，測序反應。具體步驟為：1）利用生物素標記的 oligo（dT）引物將 mRNA 反轉錄成 cDNA 雙鏈，再將合成的

35、生物素標記的 cDNA 片段用 Dpn 限制性內切酶（酶切位點是GATC）消化。2）將消化并純化后的片段克隆到含有32bp TAG 序列的標簽（tag）載體中，這樣就可以通過與標簽中序列互補的引物擴增插入的片段，再通過酶切，獲得線性化的 PCR 擴增產物（含有 cDNA 序列和特異性的 32bp 標簽序列）。3）每個微球體含有一種與 32bp 標簽序列互補的序列（anti-tag），PCR 擴增產物片段通過 32bp 標簽與 anti-tag 雜交，進而連接到微球體上，每個微球體大概可以承載 104-105個相同的 cDNA 拷貝，將微球體排列在一個表面上。4）測序反應過程，將接頭、Bbv酶（

36、S 型限制性酶，可以酶切距離識別位點9-13個堿基）識別位點和識別序列（recognition sequence）結合在微球體上的 cDNA 片段上末端的4個游離堿基，加入 16 種不同的熒光標記的解碼器探針與接頭雜交，獲得相應的熒光信號，以讀取這4個堿基的序列，經 Bbv酶消化后，在 cDNA 片段上再次產生4個堿基末端，去掉酶切序列后可以進行下一輪的分析，這樣經過5次反應就可以測出每一個微球體上長度為 17bp 的cDNA序列。該技術的特點是可以分析未知序列的基因、基因組覆蓋度高、能測得低表達豐度的基因、實驗效率高，但要選擇合適的標簽序列，如果出現基因和標簽之間的非特異性，將容易產生分析錯

37、誤。（3）RNA 測序技術(RNA-seq)該技術首先將細胞中的所有轉錄產物反轉錄為cDNA文庫(利用最新的SMS技術可略去這一步，直接對RNA進行測序20)，然后將cDNA文庫中的DNA隨機剪切為小片段(或先將RNA片段化后再轉錄)，在 cDNA 兩端加上接頭利用新一代高通量測序儀測序，直到獲得足夠的序列，所得序列通過比對(有參考基因組)或從頭組裝(denovoas-sembling，無參考基因組)形成全基因組范圍的轉錄譜。2.3.2 應用（1）SAGE技術能夠同時檢測到大量的基因轉錄本，一個測序反應可得到40個左右標簽序列。同時，由于SAGE技術的靈敏度很高，可以檢測出低豐度表達的基因，所

38、以通過該技術不僅能夠很全面的獲得基因表達的數目、表達豐度等信息。因此，SAGE技術是一種預測基因數目和發現新基因的有效途徑。SAGE還可用于在不同生理狀態、不同環境、或不同生長階段的細胞或組織的基因表達圖譜構建，對不同狀態下基因表達水平的定量或定性比較。目前，通過SAGE技術對疾病組織與正常組織的基因表達差異的進行比較應用較多，而且己發現了許多在癌癥組織中上調表達的基因。這些上調基因，尤其那些是在正常組織中不表達或少量表達的基因，很可能成為有用的腫瘤診斷和預測指標或潛在的治療位點。（2）MPSS一方面可提供某一cDNA在體內特定發育階段的拷貝數，另一方面還可測定出相應cDNA 17 bp的序列

39、，所以這就為在轉錄水平上進行基因表達分析提供了強有力的定性和定量手段，很明顯，這一技術首先可以應用于不同豐度基因的差異表達分析，制作基因轉錄圖譜，這無疑將加速新基因克隆和基因功能的分析。MPSS所獲得的基因序列可提供PCR引物，可通過比較Gen Bank EST 數據庫等進行基因定位，也可轉化為分子標記構建遺傳圖譜等等，因此該技術可廣泛用于動植物體分類學和遺傳學,功能基因組學, 蛋白質組學等研究。（3）RNA-seq的精確度高，能夠在單核苷酸水平對任意物種的整體轉錄活動進行檢測，可以用于分析真核生物復雜的轉錄本的結構及表達水平，精確地識別可變剪切位點以及cSNP(編碼序列單核普酸多態性)，提供

40、最全面的轉錄組信息；RNA-Seq除了可以確定基因組信息己知物種的轉錄本，同樣也些較低豐度的轉錄物，最大限度地收集基因組的基因表達信息，是從總體上全面研究基因表達、構建基因表達圖譜的首選策略，并可在此基礎上，發現新的基因。2.3.3 不足和展望EST 技術21,22，雖然可以直接檢測cDNA序列，但這種方法的檢測量較低、價格貴并且一般很難達到定量的分析目的；SAGE技術23,24和MPSS技術18,25克服了EST術的缺點，具備高通量、精確性、數字化信號等特點，但大多數依賴于價格昂貴的Sanger測序技術，并且短的標簽序列的有效部分不能特異性地匹配到參照基因組上。相比之下, RNA-Seq技術

41、具有數字化信號、高靈敏度、任意物種的全基因組分析、更廣的檢測范圍等諸多獨特優勢。然而和其他所有新生技術一樣，RNA-Seq 技術也面臨著一系列新問題：其一是龐大的數據量所帶來的信息學難題。其二是如何針對更復雜的轉錄組來識別和追蹤所有基因中罕見 RNA 亞型的表達變化。其三，目前的高通量測序技術大都需要較多的樣品起始量。最后，標準的 RNA-Seq 技術不能提供序列轉錄的方向信息。雖然 RNA-Seq 技術還面臨著種種困難，但作為一個剛剛起步的新技術，相信隨著相關學科的進一步發展和測序成本的進一步降低，RNA-Seq必將在轉錄組學研究領域占主導地位。參考文獻： 1 Lockhart DJ, Wi

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