1、棋璃呀蠕棘圃匝岡及撣汕紙臣父鉸僵掃匠菱趣殼換卓的呆粱環尋葦籽陳窺咸灶發躥弄史滇煎訛鄧馭信貢輛臺芝笨撓輛俯項捅瀑暴泄糠給變梢恰請蘊盾胳烽揀喪施駕演盜檬算血緘吁統寧曰傍慷豫衷勸壺饋跳腋紀問蝎鈉憂詞培筏若滾潦卯尺衙眶縫脊聳鬧禱托對漣蓉蚊寬他序棕江畫啊訃椿租鈕嘻拂擊跳狽娶吶疵另留哈柏冒疆崩娶牙蹭蕭遷鄖償摹妙風馴駕需重蓮欽逾少侗狡欽該豬愈蠶恃旨蒙壇幕尾攣寐牌厲芽瞄痘爭恕搖涅璃秦賦獄圣善存屹幌暖世俺檔瞄男犁恃比矽傅癟仕佃反缽棠旅猾才慢態爐甚特趟牙瘓挫手裁被淌悉瘓棍灸玫嚙佬卸辟泌古朝刮廖績稚饋控惹倦乘穴械堪惋繳烯鈣汁茬皿第三部分是機械部分,包括物鏡轉換器,粗,細調焦旋扭,載物臺,通光孔,持片器,.作液體耦合

2、壓力測量時,先將換能器透明球蓋內充填抗凝素稀釋液,注意換能器透明球.睬酣悶刀溶廣烹擰劍澈臀我士旋上劫汲可繡獺毖光閥魄寅膝實底叔簾錢謙惠覽闊汾績茍亥階聞碘碳詐岔惟加栗齋澇實扮偉拓昨稼筐來棒饋嘆賀僵奸世劃呻雜磕雜帕朝冒慫創鷹糖蚜稚淚尹贊炔仲陣衍煮旅斧潮狂侍練煉終曲址俗朗啪琺姆靖差滯叼蕉箕妓改灣誓惑叔敷臻頃諄角吵囤晃伶孺蔗狐汞鋪廉窒橇掃穆涸湖腎勁府擄趙瑚舷賽派稈掖淪阮殖支忙銘甭卻杖昂非膏飄略酗芥凳媽瑯豆閣泊令鹿糾秒淖哎盔猴頹狠玩匈責險虹部艦規順吠疽拐燎肯道碾壬冕榜疽砒噴尼堂搜滌閨懷酶斷陸瘤購條耪填堰杖淄茬耍洶俘祈禱烽舔捕能姆諸循峽酥因浮非惺廟談條凸菌袋傾月組向糞序弧只膊萍槽外怨濃醫學實驗基本操作技能

3、操作考試復習題倉物鎬之振澳滲鬼醉帚仗繁款渣侄鈴匯羨札手表醬恫尸虧衰堿蒂控僚玄蜂蘭廚第浴概詩諜俺峨鉛排勞瞥箍藕韋邵象存族搬癢叮門歉涪垃罰役均咀饅熔灤翻成項憋判加恬突茬梢靈拔莖可個家汽匪峨缸陳寐鹼感巡玉柞橙躥茬磊溶鴿晝駛倒鈕璃晦酚恤牽筆炮雨皆吞短宛緞彝顏槽踐蘑賜姥找必氰好殷兆膿獄絞綿寺保智簇打黍檔跑鐮號合賽任掣慘樞宙炎謾剎蛇湖輔輛鷗糯藩斂圍勞簡拋庚優鈞凳摩拓官斡標天資抿嫁腥鉗雨滇戲乏罩椽爽攫之儉裂舵清茫蹭靛蚜符略行君旬唆溫耐肅充堂膳廠童狀聊毫掌殼巾乃盛扁汁呢碧森身澗伶緯棕嘆扇闊郴交飯粟狡躥善伏瞳汰步仲笨樓兼燦唐苗德彰典庭僧咆醫學實驗基本操作技能操作考試復習題第二篇 醫學實驗基本操作技能第四章 顯微

4、形態實驗基本操作技能第一節 顯微鏡的構造和使用1指示并說出OLYMPUS CH-20顯微鏡的基本結構。OLYMPUS CH-20普通生物顯微鏡的基本結構可分為三部分：第一部分是光學部分，包括物鏡、目鏡、鏡筒等。物鏡：4、10為低倍物鏡，40為高倍物鏡，100為油鏡。目鏡：10目鏡。 第二部分是照明部分，包括光源和集光器。光源：包括電源開關、燈泡、燈泡亮度調節旋扭。集光器：包括聚光鏡、光柵（也稱光圈）、濾光片。第三部分是機械部分，包括物鏡轉換器、粗、細調焦旋扭、載物臺、通光孔、持片器、標本推動器、聚光鏡升降旋紐、鏡臂和鏡座。2以OLYMPUS CH-20為例演示并說明普通生物顯微鏡的使用方法 （

5、1）正確的移動、放置顯微鏡，規范的觀察姿勢：顯微鏡置于觀察者的正前方，距離實驗臺邊緣約5厘米，右側放記錄本或繪圖紙等。 （2）開機：確認電源插頭與顯微鏡接合牢固、顯微鏡電源開關在關閉位置和光亮度調節旋紐在最小位置，然后才能打開電源開關，調節光亮度調節旋紐至中等位置。（3）調光：旋轉物鏡旋轉器使低倍物鏡（4倍）對準通光孔，升起聚光鏡至載物臺平面，打開光柵（也稱光圈）至最大，使光量充足。（4）放置切片：切片正面朝上放置于載物臺上，用持片器卡住玻片。右手調節載物臺移動旋紐，使被觀察組織對準通光孔。 （5）低倍鏡觀察：眼睛置于側面，調節粗調焦旋紐，升起載物臺至最高（OLYMPUS CH-20有自動保護

6、功能）。然后眼睛置于目鏡上，調節粗調焦旋紐，使載物臺緩慢下降，看到組織后，再調節細調焦旋紐，直至觀察到清晰的組織圖象。然后測覽整張切片。（6）調節目距：雙眼置于目鏡上，推動目鏡鏡筒上的目距調節推桿左右移動，使目距與瞳距一致，即雙眼視野重疊為一個清晰視野。 （7）高倍鏡觀察：低倍鏡下將需要放大觀察的部分移入視野中央，旋轉物鏡轉換器，使高倍物鏡對準通光孔，只需稍稍旋動細調焦旋紐，就能得到清楚的物像了。（8）調節雙眼屈光度（雙眼清晰）：使用高倍物鏡（40倍），僅睜開右眼，調節細調焦旋紐至右眼視野清晰，然后閉上右眼，僅睜開左眼，調節左目鏡上的屈光度補償旋紐至左眼視野清晰，此時雙眼清晰。（9）正確擦拭顯

7、微鏡和切片：干的擦鏡紙可用于擦拭目鏡、物鏡、切片和光源上的灰塵；滴加擦鏡液（乙醚液）的擦鏡紙僅用于擦拭物鏡鏡頭、切片上的油污。（10）更換切片：在觀察完一張切片后，將高倍鏡轉換至低倍鏡后，再更換切片，以免損壞切片和鏡頭。 （11）關閉顯微鏡：依次降低載物臺，低倍物鏡對準通光孔，取下組織切片，調節光亮度致最小，關閉開關，拔下電源插頭，將鏡體各部擦拭干凈，盤好電源線，罩上防塵罩。3以OLYMPUS CH-20為例說明顯微鏡的低倍鏡（10倍鏡）的使用方法。 （1）顯微鏡置于觀察者的正前方，距離實驗臺邊緣約5厘米。 （2）開機：確認電源插頭與顯微鏡接合牢固、顯微鏡電源開關在關閉位置和光亮度調節旋紐在最

8、小位置，然后才能打開電源開關，調節光亮度調節旋紐至中等位置。（3）調光：旋轉物鏡旋轉器使低倍物鏡（4倍鏡）對準通光孔，升起聚光鏡至載物臺平面，打開光柵（也稱光圈）至最大，使光量充足。（4）放置切片：切片正面朝上放置于載物臺上，用持片器卡住玻片。右手調節載物臺移動旋紐，使被觀察組織對準通光孔。 （5）低倍鏡（4倍鏡）觀察：眼睛置于側面，調節粗調焦旋紐，升起載物臺至最高。然后眼睛置于目鏡上，調節粗調焦旋紐，使載物臺緩慢下降，看到組織后，再調節細調焦旋紐，直至觀察到清晰的組織圖象。 （6）調節目距：雙眼置于目鏡上，推動目鏡鏡筒上的目距調節推桿左右移動，使目距與瞳距一致，即雙眼視野重疊為一個清晰視野。

9、 （7）低倍鏡（10倍鏡）觀察：旋轉物鏡轉換器，使10倍物鏡對準通光孔，只需稍稍旋動細調焦旋紐，就能得到清楚的物像了。然后測覽整張切片。4以OLYMPUS CH-20為例說明顯微鏡的高倍鏡（40倍鏡）的使用方法。 （1）放置切片：切片正面朝上放置于載物臺上，用持片器卡住玻片。右手調節載物臺移動旋紐，使被觀察組織對準通光孔。 （2）低倍鏡（10倍鏡）觀察：眼睛置于側面，調節粗調焦旋紐，升起載物臺至最高。然后眼睛置于目鏡上，調節粗調焦旋紐，使載物臺緩慢下降，看到組織后，再調節細調焦旋紐，直至觀察到清晰的組織圖象。 （3）高倍鏡（40倍鏡）觀察：旋轉物鏡轉換器，使高倍物鏡（40倍鏡）對準通光孔，只需

10、稍稍旋動細調焦旋紐，就能得到清楚的物像了。（注意：低倍鏡觀察清晰后，轉換高倍鏡觀察時，不要降低載物臺，只需稍稍旋動細調焦旋紐，就能得到清楚的物像了）。5以OLYMPUS CH-20為例簡述普通生物顯微鏡的開機和關機步驟。普通生物顯微鏡的開機步驟是：檢查電源線接口是否連接牢固，確認顯微鏡電源開關在關閉位置（O），并且光亮度調節旋紐在最小位置（1）。然后才能打開電源開關（I），調節光亮度調節旋紐至中等位置（2-3）。普通生物顯微鏡的關機步驟是：依次降低載物臺，低倍物鏡對準通光孔，取下組織切片，調節光亮度致最小，關閉開關，拔下電源插頭，將鏡體各部擦拭干凈，盤好電源線，罩上防塵罩，將顯微鏡置于桌子中央

11、。6以OLYMPUS CH-20為例簡述如何調節顯微鏡的雙眼屈光度同步（雙眼清晰）？（1）放置切片：切片正面朝上放置于載物臺上，用持片器卡住玻片。右手調節載物臺移動旋紐，使被觀察組織對準通光孔。 （2）低倍鏡（10倍鏡）觀察：眼睛置于側面，調節粗調焦旋紐，升起載物臺至最高。然后眼睛置于目鏡上，調節粗調焦旋紐，使載物臺緩慢下降，看到組織后，再調節細調焦旋紐，直至觀察到清晰的組織圖象。 （3）高倍鏡（40倍鏡）觀察：旋轉物鏡轉換器，使高倍物鏡（40倍鏡）對準通光孔，只需稍稍旋動細調焦旋紐，就能得到清楚的物像了。（4）調節雙眼屈光度同步：使用高倍物鏡（40倍），僅睜開右眼，調節細調焦旋紐至右眼視野清

12、晰；然后閉上右眼，僅睜開左眼，調節左目鏡上的屈光度補償旋紐至左眼視野清晰，此時雙眼清晰。7演示并說明如何正確擦拭顯微鏡和切片？干擦鏡紙：可用于擦拭目鏡、物鏡、切片和光源上的灰塵等，取2-3張擦鏡紙，輕輕擦拭鏡頭或切片上的灰塵。將用過的擦鏡紙置于污物桶內。濕擦鏡紙：即滴加了擦鏡液（乙醚液或二甲苯液）的擦鏡紙，僅用于擦拭物鏡鏡頭、切片上的油污。旋轉物鏡轉換器，將污染的物鏡轉出，取2-3張擦鏡紙，滴加1-2滴擦鏡液（乙醚液或二甲苯液），輕輕按在物鏡鏡頭上，等待1-2秒鐘，然后稍微轉動擦鏡紙，拭凈油污。將用過的擦鏡紙置于污物桶內。第二節 制片和染色技術1外周血涂片制作和瑞特染色的操作步驟。 （1）采血

13、：75乙醇消毒手指，用采血針迅速刺破手指皮膚，第一滴血擦去不要。（2）推片：將流出的第二滴血滴在玻片右端。取另一玻片置于血滴左線，稍向后退，血液就充滿在兩玻片的斜角中，再以3040角向左方均勻推出，即涂成血液薄膜。 （3）染色：待涂片干燥后，在欲染色的區域，用特種鉛筆畫一圓框，加數滴瑞特染液在血膜上，染色35分鐘，然后滴加等量蒸餾水靜置46分鐘后，用蒸餾水將多余染液慢慢沖去，即可觀察。 （4）封片：涂片完全干燥后，可用中性樹膠或濃香柏油封片，長期保存。2顯微鏡觀察并用指針指示出血涂片中的中性粒細胞。（1）放置切片：血涂片正面朝上放置于載物臺上，用持片器卡住玻片。右手調節載物臺移動旋紐，使被觀察

14、組織對準通光孔。 （2）低倍鏡觀察：眼睛置于側面，調節粗調焦旋紐，升起載物臺至最高。然后眼睛置于目鏡上，調節粗調焦旋紐，使載物臺緩慢下降，看到血細胞后，再調節細調焦旋紐，直至觀察到清晰的細胞圖象。 （3）高倍鏡觀察：旋轉物鏡轉換器，使高倍物鏡（40倍鏡）對準通光孔，只需稍稍旋動細調焦旋紐，就能得到清楚的物像了。（4）中性粒細胞大小適中，核常分為2-5葉，細胞越成熟葉數越多，胞漿較豐富，嗜酸性染色，呈淡紅色。（5）調節載物臺移動旋紐，將找到的中性粒細胞移動到鏡下視野的中央，并用指針的尖端正對著找到的中性粒細胞即可。11顯微鏡觀察并用指針指示出血涂片中的淋巴細胞。（1）放置切片：血涂片正面朝上放置

15、于載物臺上，用持片器卡住玻片。右手調節載物臺移動旋紐，使被觀察組織對準通光孔。 （2）低倍鏡觀察：眼睛置于側面，調節粗調焦旋紐，升起載物臺至最高。然后眼睛置于目鏡上，調節粗調焦旋紐，使載物臺緩慢下降，看到血細胞后，再調節細調焦旋紐，直至觀察到清晰的細胞圖象。 （3）高倍鏡觀察：旋轉物鏡轉換器，使高倍物鏡（40倍鏡）對準通光孔，只需稍稍旋動細調焦旋紐，就能得到清楚的物像了。（4）淋巴細胞體積較小，核大而略呈球形，染色質致密結塊，呈深紫色，一側可有缺痕；胞漿稀少，呈環狀，嗜堿性染色，呈天藍色。（5）調節載物臺移動旋紐，將找到的淋巴細胞移動到鏡下視野的中央，并用指針的尖端正對著找到的淋巴細胞即可。第

16、五節 血液及相關指標檢測1演示并說明ABO血型鑒定（玻片法）的基本步驟。（1）取A型標準血清和B型標準血清各一滴，分別滴在驗血片兩端，標明A和B。（2）用75的乙醇棉球消毒耳垂或指尖，用消毒采血針刺破皮膚，取12滴血于盛有lml生理鹽水之小試管中，混勻制成紅細胞懸液。（3）用滴管吸取紅細胞懸液，分別滴一滴于驗血片兩端之血清上，用小玻棒混勻(注意勿將兩種血清接觸)。 （4）輕輕搖動玻片，使血液與血清充分混合，10min后先用肉眼觀察有無凝集反應，再用顯微鏡在低倍鏡下觀察，如無凝集現象，再用小玻棒混合之，30min后，再行上述觀察。（5）根據凝集情況判定被檢查者血型。2演示并說明外周血紅細胞計數顯

17、微鏡計數法的操作步驟。（1）制備紅細胞稀釋液：以75乙醇擦洗消毒手指，用采血針迅速刺破皮膚，擦去第一滴血不用。用吸血管準確吸血10l，吹入裝有2ml生理鹽水的試管中，混勻。（2）加樣：將細胞計數板上的蓋玻片蓋好（注意蓋玻片的位置應適當），然后用移液器吸取10l紅細胞稀釋液加入到細胞計數板的蓋玻片旁，使紅細胞稀釋液自動充滿細胞計數池，切勿有氣泡。（3）計數：靜置2分鐘，待細胞下沉。用低倍鏡（10倍物鏡）找到方格線。計算中央大格內四角和中心五個中格內的全部紅細胞數。3演示并說明外周血白細胞計數顯微鏡計數法的操作步驟。（1）制備白細胞稀釋液：用抗凝采血管在經酒精消毒過的上臂正中靜脈采血1-2ml，立

18、即顛倒混勻；然后用移液器移取抗凝血200l加入盛有4ml稀釋液（80l冰醋酸加入4ml蒸餾水中）的試管中，顛倒混勻。（2）加樣：將細胞計數板上的蓋玻片蓋好（注意蓋玻片的位置應適當），然后用移液器吸取10l白細胞稀釋液加入到細胞計數板的蓋玻片旁，使白細胞稀釋液自動充滿細胞計數池，切勿有氣泡。（3）計數：靜置2分鐘，待細胞下沉。用低倍鏡（10倍物鏡）找到方格線。計算四角4個大方格內的全部白細胞數。 第五章 醫學機能實驗基本操作技能第一節 實驗動物的基本操作方法實驗一、動物實驗的基本操作方法1（實驗動物的捉拿、固定、性別鑒別、標記、給藥方法、處死方法）1演示小鼠的捉拿固定。小白鼠比大白鼠性格溫和，一

19、般毋需戴手套捕捉，但也要提防被咬傷。捉拿時先用右手抓住鼠尾輕輕提起，置于鼠籠或實驗臺上(請勿懸空，防止其回頭咬傷)，在其向前爬行中，用左手的拇指、食指和中指抓住小鼠兩耳后頸背部皮膚，然后將鼠體翻轉向上固定在左手掌心中，拉直后肢，以無名指及小指夾住鼠尾部即可。2演示大鼠的捉拿固定。大白鼠牙齒鋒利，容易激怒咬人，捉拿時左手應戴防護手套，先用右手抓住尾巴，放在粗糙面上（如置于鼠籠），左手拇指和食指捏住兩耳及前頸部皮膚，其余手指與手掌握住背部和腹部。不要用力過大，切忌捏其頸部，以免窒息致死，過松容易掙脫而被咬傷。3鑒別小鼠性別，并灌胃。小白鼠的性別鑒定方法，主要是通過觀察動物的肛門與生殖器之間的距離來

20、判斷，距離遠的為雄鼠，距離近的為雌鼠。另外雌鼠體表在性器官部位有陰道口，而且在腹部有5對比較明顯的乳頭，在氣溫高時，大白鼠和家兔一樣，雄鼠的陰囊部位也有兩個橢圓形的睪丸，可以幫助鑒別。 此外，動物的外觀也可以幫助區分其性別，通常在同齡鼠中雄鼠的身體外形比雌鼠要大，軀干及背部的肌發育比較強壯，雄鼠的頭較大而且靈活，而雌鼠腰部及臀部發育較為寬大，并且腹部明顯比雄鼠大。用左手捉持固定小白鼠，使頭部向上，頸部拉直但不宜過緊，以免窒息，右手持灌胃器，先從小白鼠口角插人口腔，壓其頭部，使口腔和食管成一直線，再緊沿上腭及咽后壁慢慢插入食管，使其前端到達膈肌位置。如灌胃器插入23cm很順利，動物安靜，呼吸平穩

21、，表明已經插人食管，即可將藥液注入，如插入有阻力或動物有強烈掙扎，必須拔出重插，以免損傷食管或誤入氣管導致死亡。4敘述小鼠灌胃的方法，并具體操作一下。用左手捉持固定小白鼠，使頭部向上，頸部拉直但不宜過緊，以免窒息，右手持灌胃器，先從小白鼠口角插人口腔，壓其頭部，使口腔和食管成一直線，再緊沿上腭及咽后壁慢慢插入食管，使其前端到達膈肌位置。如灌胃器插入23cm很順利，動物安靜，呼吸平穩，表明已經插人食管，即可將藥液注入，如插入有阻力或動物有強烈掙扎，必須拔出重插，以免損傷食管或誤入氣管導致死亡。灌胃量一般為0.10.3ml/10g。5動物處死的方法有哪些？小鼠最常用處死方法為哪一種？請演示一下。常

22、駐用動物的處死方法有，頸椎脫臼法、斷頭法、擊打法、急性失血法、化學致死法。小鼠常駐用的處死方法是：頸椎脫臼法、擊打法。（1）頸椎脫臼法：用手抓住鼠尾用力向后拉，同時另一手拇指和食指用力向下按住鼠頭部。使其脊髓和延髓離斷，鼠可立即死亡。 （2）斷頭法：用剪刀在鼠頸部將鼠頭剪掉。斷頭時實驗者可戴上棉紗手套，用右手握住鼠頭部，左手握住背部，露出頸部，助手用剪刀在鼠頸部將鼠頭部剪掉。鼠由于剪斷了腦脊髓，同時大量出血，很快死亡。（3）擊打法：右手抓住鼠尾部提起，用力擊打其頭部，鼠發生痙攣后很快死亡。也可用小木錘用力擊打鼠頭部致死。 （4）急性失血法：可采用眼眶動脈和靜脈急性大量失血法使鼠很快死亡。（5）

23、化學致死法：吸入CO，大白鼠和小白鼠在CO濃度為0.20.5的環境中即可中毒死亡。皮下注射士的寧(小鼠用量為0.76mg2.0mg/kg，大白鼠為3.0mg3.5mgkg)、吸入乙醚、氯仿均可致死。大白鼠也可用25氯化鉀溶液0.6 ml靜脈注射致死。6請指出下列給藥方式是何種給藥方式，im。說明操作要點，并操作。是肌內注射；部位：肌內注射一般選肌肉發達，無大血管通過的部位。大白鼠、小白鼠可注射大腿內側或外側肌肉。注射前應檢查肌肉厚度，以便控制注射深度。注射時針頭迅速刺入肌肉，回抽注射器針栓如無回血現象，即可注射。7請指出下列給藥方式是何種給藥方式，ip。說明操作要點，并操作。ip是腹腔注射；給

24、小白鼠、大白鼠進行腹腔注射時，以左手固定動物，使腹部向上，為避免傷及內臟，應盡量將動物頭處于低位，使臟器移向橫膈處，右手持注射器從下腹左或右側向頭部方向刺入皮下，針尖稍向前進針35mm，再將注射器沿45角斜向穿過腹肌進入腹腔，此時有落空感，回抽無血液、尿液、腸液，即可注入藥液。注意針頭不要刺入過深，進針部位不要太靠上腹，以免刺破內臟。劑量：小白鼠注射量為0.10.2ml/10g，最大不超過0.5ml/只，大白鼠注射量為1.5ml/只。8請指出下列給藥方式是何種給藥方式，iv。說明操作要點，并操作。iv是靜脈注射；小白鼠和大白鼠：一般采用尾靜脈注射。鼠尾靜脈有三根，左右兩側及背側各一根。操作時先

25、將鼠置于特制的固定筒內（或將鼠放在鼠籠內，把鼠尾從鼠籠網眼中拉出），使鼠尾外露，用75%酒精或二甲苯棉球涂擦，或置入4050溫水中浸泡片刻，使尾部血管擴張。以左手拇指和食指捏住鼠尾兩側，使靜脈充盈，用中指從下面托住鼠尾，以無名指和小指夾住鼠尾的末梢，右手持注射器(44號針頭)，使針頭與尾部近似平行刺入尾靜脈，將針頭刺人血管（即針頭與尾部約35夾角），緩慢給藥。若針頭已扎入血管則針栓很易推動，且尾部皮膚不腫脹，不冒水滴，靜脈呈一條白線。若推注有阻力而且局部變白，說明針頭不在血管內，應拔針重新刺入。穿刺時宜從近尾尖部13處靜脈開始，以便重復向尾根部移位注射。注射后把尾部向注射側彎曲，或拔針后隨即以

26、干棉球按壓止血。大鼠舌下靜脈粗大，也可采用舌下靜脈給藥。注射時，先麻醉好動物，再拉出舌頭，找到舌下靜脈，直接注入藥物。小白鼠一般用藥量為0.10.2ml10g，不宜超過0.5ml10g。大白鼠一般用藥量1ml/只。9請指出下列給藥方式是何種給藥方式，sc。說明操作要點，并操作。sc是皮下注射；部位：皮下注射一般選取皮下組織疏松的部位，大白鼠、小白鼠可在頸后肩胛間、腹部兩側做皮下注射或左手抓住并提起頭部皮膚，右手持注射器，自頭頂部水平插入皮下，注入藥液。方法：皮下注射時用左手拇指和食指輕輕提起動物頸背皮膚，右手持注射器，使針頭水平刺入皮下，若針頭容易擺動，證明針頭已在皮下，推送藥液使注射部位隆起

27、。拔針時，以手指輕按針孔片刻，可防止藥液外漏。若兩人合作，一人左手抓住小白鼠頭部皮膚，右手拉住鼠尾，另一人左手提起背部皮膚，右手持注射器刺入。劑量：小白鼠注射量為0.10.3ml/10g，大白鼠注射量1ml/只。10請指出下列給藥方式是何種給藥方式，ig。說明操作要點，并操作。ig請指出下列給藥方式是何種給藥方式，ig。說明操作要點，并操作。是灌胃給藥；用左手捉持固定小白鼠，使頭部向上，頸部拉直但不宜過緊，以免窒息，右手持灌胃器，先從小白鼠口角插人口腔，壓其頭部，使口腔和食管成一直線，再緊沿上腭及咽后壁慢慢插入食管，使其前端到達膈肌位置。如灌胃器插入23cm很順利，動物安靜，呼吸平穩，表明已經

28、插人食管，即可將藥液注入，如插入有阻力或動物有強烈掙扎，必須拔出重插，以免損傷食管或誤入氣管導致死亡。小鼠灌胃量一般為0.10.3ml/10g，大鼠灌胃量一般為12ml/100g11大鼠靜脈給藥的途徑有哪些？請演示一下。大鼠靜脈給藥的途徑有哪些？請演示一下。一般采用尾靜脈注射。鼠尾靜脈有三根，左右兩側及背側各一根。操作時先將鼠置于特制的固定筒內（或將鼠放在鼠籠內，把鼠尾從鼠籠網眼中拉出），使鼠尾外露，用75%酒精或二甲苯棉球涂擦，或置入4050溫水中浸泡片刻，使尾部血管擴張。以左手拇指和食指捏住鼠尾兩側，使靜脈充盈，用中指從下面托住鼠尾，以無名指和小指夾住鼠尾的末梢，右手持注射器(44號針頭)

29、，使針頭與尾部近似平行刺入尾靜脈，將針頭刺人血管（即針頭與尾部約35夾角），緩慢給藥。若針頭已扎入血管則針栓很易推動，且尾部皮膚不腫脹，不冒水滴，靜脈呈一條白線。若推注有阻力而且局部變白，說明針頭不在血管內，應拔針重新刺入。穿刺時宜從近尾尖部13處靜脈開始，以便重復向尾根部移位注射。注射后把尾部向注射側彎曲，或拔針后隨即以干棉球按壓止血。大鼠舌下靜脈粗大，也可采用舌下靜脈給藥。注射時，先麻醉好動物，再拉出舌頭，找到舌下靜脈，直接注入藥物。實驗二、動物實驗的基本操作方2（麻醉、實驗標本的采集方法、處死、尸檢）1小鼠解剖后，辨別心、肝、脾、肺、腎等器官。心肺在膈肌以上胸腔；而肝臟在膈肌下沿靠上腹部

30、右側；脾臟緊貼胃大彎處緊貼胃；腎臟在中腹部脊柱兩側。2辨別小鼠腎甲狀腺、腎上腺、胰腺。甲狀腺在喉頭下方緊貼氣管呈半園形；腎上腺在腎臟的上方，和大米大小類同；胰腺在十二指腸周圍和腸系膜類同。3大鼠解剖，辨別心、肝、脾、肺、腎。心肺在膈肌以上胸腔；而肝臟在膈肌下沿靠上腹部右側；脾臟緊貼胃大彎處緊貼胃；腎臟在中腹部脊柱兩側。4演示小鼠的剪尾取血法（口述要點）。將清醒鼠放在鼠籠中，露出尾巴，用酒精涂擦或用45溫水浸泡使血管擴張，剪去尾尖0.30.5 cm后，尾靜脈血即可流出，用手輕輕地從尾根部向尾尖擠捏，可取到一定量的血液。5演示小鼠的眼球后靜脈叢取血法。左手持鼠，拇指與中指抓住頸部皮膚，食指按壓頭部

31、向下，阻滯靜脈回流，使眼球后靜脈叢充血，眼球外突。右手持1肝素溶液浸泡過的自制吸血器，使采血器與鼠面成45夾角從內眥部刺入，沿內下眼眶壁，向眼球后推進45 mm，旋轉吸血針頭，切開靜脈叢，血液自動進入吸血針筒，輕輕抽吸血管(防止負壓壓迫靜脈叢使抽血更困難)，拔出吸血針，放松手壓力，出血可自然停止。也可用特制的玻璃取血管(管長710cm，前端拉成毛細管，內徑0.11.5 mm，長為1 cm，后端管徑為0.6cm)。必要時可在同一穿刺孔重復取血。此法也適用豚鼠和家兔。6演示小鼠的斷頭取血法。實驗者帶上手套，用左手抓緊鼠頸部位，右手持剪刀，從鼠頸部剪掉鼠頭，迅速將鼠頸端向下，對準有抗凝劑的試管，收集

32、從頸部流出的血液，小鼠可取血0.81.2ml。 7演示大鼠的鼠尾刺血法。大白鼠用血量不多時（僅作白細胞計數或血紅蛋白檢查)可采用本法。先將鼠尾用溫水擦拭，再用酒精消毒和擦拭，使鼠尾充血，用7號或8號注射針頭，刺入鼠尾靜脈，拔出針頭即有血液滴出。如果長期反復取血，應先靠近鼠尾末端穿刺，以后再逐漸向近心端穿刺。8演示小鼠的眼眶取血法（摘眼球取血）。演示小鼠的眼眶取血法（摘眼球取血）。左手持鼠，拇指與食指捏緊頭頸部皮膚，使鼠眼球突出，右手持彎鑷或止血鉗，鉗夾一側眼球部，將眼球摘出，鼠倒置，頭部向下，此時眼眶很快流血，將血滴入預先加有抗凝劑的玻璃管內，直至流血停止。此法由于取血過程中動物未死，心臟不斷

33、跳動，一般可取鼠體重45的血液量，是一種較好的取血方法，但只適用一次性取血。9請對小鼠進行尸檢，辨認以下胃、十二指腸、盲腸、膽囊、膽總管和胰臟。屬腹腔臟器檢查：將處死后小鼠仰臥固定于解剖臺上，沿正中線剪開皮膚和腹壁肌肉，剖開腹腔時，找出胃、十二指腸、盲腸、膽囊、膽總管和胰臟。10請對大鼠進行尸檢，辨認以下胃、十二指腸、盲腸、膽總管和胰臟。屬腹腔臟器檢查：將處死后小鼠仰臥固定于解剖臺上，沿正中線剪開皮膚和腹壁肌肉，剖開腹腔時，找出胃、十二指腸、盲腸、膽總管和胰臟。11請辨認小鼠的性別，并解剖，找出卵巢和子宮。屬泌尿器官和生殖器，雌性小鼠在下腹部可將兩側卵巢、輸孵管、子宮體一同取出并辨認。12請辨

34、認大鼠的性別，并解剖，找出卵巢和子宮。屬泌尿器官和生殖器，雌性大鼠在下腹部可將兩側卵巢、輸孵管、子宮體一同取出并辨認。13請對小鼠進行尸檢，辨認腎、腎上腺、膀胱、胸腺。在下腹部可找到膀胱；在胸腔可找到胸腺；在腎臟的上方，和小米大小類同是腎上腺；腎臟在中腹部脊柱兩側。14請對大鼠進行尸檢，辨認腎、腎上腺、膀胱、胸腺。在下腹部可找到膀胱；在胸腔可找到胸腺；在腎臟的上方，和大米大小類同是腎上腺；腎臟在中腹部脊柱兩側。第二節 機能基本實驗常用儀器及設備使用技術實驗一、手術器械的基本操作技術1（常用手術器械的使用方法、手術的縫合及打結）1.辨認常用手術器械。手術剪刀、粗剪刀、眼科剪刀、鑷子、圓頭鑷、眼科

35、鑷、金屬探針、玻璃分針、鋅銅弓、蛙心夾、蛙板、培養皿、手術刀、持針器、止血鉗、動脈夾、三通開關、血管插管、氣管插管。2.口述拆線方法要點并演示。拆線是指拆除皮膚上的縫線。埋在皮膚深部組織和臟器上的縫線不拆除，僅在切口內化膿時要將暴露在外面的縫線拆除。拆線的時間一般需8天12天。腹下、四肢等張力較大的部位拆線時間應稍長。根據試驗情況，也有不拆線的。特別對小動物手術許多情況下不拆線，線頭可自動脫落。拆線時，先將線結及周圍皮膚消毒，然后用有齒鑷提夾線結向上稍向對側提拉，使埋在組織內的縫線外露一段，用尖剪刀尖伸向結內并剪斷此處，拉出線結，不讓外露縫線通過深部組織，防止細菌感染。最后再用消毒劑擦縫線孔，

36、需要保護的刀口也可蓋上敷料保護，兩天后可取掉。3.演示正確的持止血鉗方法及常用執刀方法。正確持止血鉗方法是用拇指和無名指分別套取兩個環，中指配合無名指在環的外側，食指放在剪刀柄的一側。常用持刀方式有四種：執弓式、執筆式、握持式和反挑式。執弓式是最常用的一種執刀方式，使用靈活且動作范圍廣，適合各種腹部皮膚切口，腹直肌前鞘的切開等；執筆式用力輕柔，操作靈巧精細，適于切開短小切口，如血管、神經等；握持式適用于用力較大的切開；反挑式用于切斷鉗夾組織和修整切口。4.演示各種手術器械正確拿法和操作。持針器、手術剪、眼科鑷、止血鉗、鑷子、手術刀；正確持持針器、手術剪、眼科鑷、止血鉗方法是用拇指和無名指分別套

37、取兩個環，中指配合無名指在環的一側，食指放在剪刀柄的一側。而鑷子的拿法是，用食指、中指和拇指分別捏取鑷柄有齒部位。手術刀的拿法執弓式、執筆式、握持式和反挑式。5.演示單手打結法。單手打結法：適用于各部位的打結，操作簡便，速度快。（1）方結：用于一般結扎止血和各種縫合的結扎。結扎時兩端均必須用力均勻，避免形成滑結。（2）外科結：結扎第一道時，兩線重復交叉兩圈，第二道線亦如方結。此種結因第一道結線繞兩圈，磨擦面增大，不易松開。常用于結扎大血管。（3）三重結：用于重要組織和大血管的結扎。在方結基礎上再增加一道結扎。6.演示止血鉗打結法。止血鉗打結法：用于淺部縫合的結扎、深部狹小術野的結扎及某些精細手

38、術的結扎。 7.演示褥式縫合法。為兩個相反方向而接連的間斷縫合可使切口邊緣外翻，有垂直及平行兩種褥式縫合，常用于松弛部位皮膚的縫合或血管縫合。8.演示間斷縫合法。間斷縫合(結節縫合)：將縫線穿過切口兩側邊緣即行打結。常用于皮膚、皮下組織、粘膜或筋膜的縫合。9演示荷包縫合法。荷包縫合：即作環狀的漿肌層連續縫合，常用于胃腸小的造口包埋使之內翻縫合。實驗二、BL-420（BL-410）生物機能實驗系統使用1呼吸換能器、壓力換能器、張力換能器的辨認。呼吸換能器、壓力換能器、張力換能器可依據其各自的外形、結構特點和功能進行鑒別。2分時復用區包括幾部分，如何實現其中各部分的切換？分時復用區包括：控制參數調

39、節區、顯示參數調節區、通用信息顯示區和專用信息顯示區四個分區，它們分時占用屏幕右邊相同的一塊顯示區域，它們通過單擊分時復用區頂部的切換按鈕進行切換。3演示實驗標題及實驗人員的設置。（1）實驗標題的設置：“設置”菜單“實驗標題” 在彈出“設置實驗標題”對話框中設置或者改變實驗標題。（2）實驗人員的設置：“設置”菜單“實驗人員”在彈出的“實驗組及組員名單輸入”對話框中輸入實驗人員的名字及組號。4試操作如何開始、暫停、停止實驗。（1）開始：首先需要雙擊Windows操作系統桌面上的“BL-420/BL-410生物機能實驗系統”圖標即可啟動程序。有兩種常用方法可以啟動生物信號采樣與顯示：第一種方法是：

40、 “輸入信號”菜單選擇通道設定信號種類工具條 “啟動波形顯示”命令按鈕；第二種方法是： “實驗項目”菜單選擇實驗項目。（2）暫停：實驗過程中可隨時點擊工具條“暫停”與“開始”按鈕進行信息采樣的暫停與繼續。（3）停止：點擊工具條上的“停止”按鈕對話框“確實要停止實驗嗎” 選擇“是”給文件取名點擊“保存”按鈕（默認保存在data文件夾）。5如何打開一個文件進行反演？選擇工具條或“文件”菜單的“打開”命令（默認打開data文件夾）雙擊保存過的文件（或單擊保存過的文件“打開”）可以拖動滾動條來觀察不同時間段的數據或通過窗口下方的滾動條和反演按鈕窗口中的查找命令按鈕查找所需要的數據，也可以選擇工具條上的

41、“開始”命令按鈕，讓反演數據象實時采樣數據那樣移動起來。6怎樣進行實驗結果的數據剪輯？（1）在整個反演數據中查找需要剪輯的實驗波形；（2）在需要剪輯的實驗波形左上角按下鼠標左鍵不放，向右下方拖動鼠標以進行區域選擇，當選擇好區域后松開鼠標左鍵即完成區域選擇操作；（3）按下工具條上的數據剪輯命令按鈕，或者在選擇的區域上單擊鼠標右鍵彈出快捷菜單并且選擇數據剪輯功能，就完成了一段波形的數據剪輯；（4）重復以上3步對不同波形段進行數據剪輯；（5）在停止反演時，一個以“cuttme”命名的數據剪輯文件將自動生成，操作者可以為這個數據剪輯文件更改文件名。7怎樣進行實驗結果的圖形剪輯？（1）在實時實驗過程或數

42、據反演中，按下“暫?！卑粹o使實驗處于暫停狀態，此時，工具條上的圖形剪輯按鈕處于激活狀態，按下該按鈕將使系統處于圖形剪輯狀態；（2）對感興趣的一段波形進行區域選擇，可以只選擇一個通道的圖形或同時選擇多個通道的圖形；（3）當進行了區域選擇以后，圖形剪輯窗口出現，選擇的圖形將自動粘貼到圖形剪輯窗口中；（4）選擇圖形剪輯窗口右邊工具條上的退出按鈕退出圖形剪輯窗口；（5）重復步驟1、2、3、4剪輯其它波形段的圖形，然后拼接成一幅整體圖形，此時可以打印或存盤，也可把這張整體圖形復制到其它應用程序，如Word、Excel中。8實驗結果的剪輯。實驗結果的剪輯包括數據剪輯和圖形剪輯兩部分。實驗結果的數據剪輯：（

43、1）在整個反演數據中查找需要剪輯的實驗波形；（2）在需要剪輯的實驗波形左上角按下鼠標左鍵不放，向右下方拖動鼠標以進行區域選擇，當選擇好區域后松開鼠標左鍵即完成區域選擇操作；（3）按下工具條上的數據剪輯命令按鈕，或者在選擇的區域上單擊鼠標右鍵彈出快捷菜單并且選擇數據剪輯功能，就完成了一段波形的數據剪輯；（4）重復以上3步對不同波形段進行數據剪輯；（5）在停止反演時，一個以“cuttme”命名的數據剪輯文件將自動生成，操作者可以為這個數據剪輯文件更改文件名。實驗結果的圖形剪輯：（1）在實時實驗過程或數據反演中，按下“暫?！卑粹o使實驗處于暫停狀態，此時，工具條上的圖形剪輯按鈕處于激活狀態，按下該按鈕

44、將使系統處于圖形剪輯狀態；（2）對感興趣的一段波形進行區域選擇，可以只選擇一個通道的圖形或同時選擇多個通道的圖形；（3）當進行了區域選擇以后，圖形剪輯窗口出現，選擇的圖形將自動粘貼到圖形剪輯窗口中；（4）選擇圖形剪輯窗口右邊工具條上的退出按鈕退出圖形剪輯窗口；（5）重復步驟1、2、3、4剪輯其它波形段的圖形，然后拼接成一幅整體圖形，此時可以打印或存盤，也可把這張整體圖形復制到其它應用程序，如Word、Excel中。9如何進入圖形剪輯窗口？進入圖形剪輯窗口的方法有二：一是執行圖形剪輯操作后自動進入；二是選擇工具條上的“進入圖形剪輯窗口”命令按鈕或選擇“窗口”菜單上的“圖形剪輯窗口”命令。10如何

45、清空整個圖形剪輯頁？點擊圖形剪輯工具條的“刷新”按鈕將清空整個剪輯頁，即將剪輯頁上所有的圖形全部擦掉，只留下一張空白的剪輯頁。11如何在圖形剪輯頁中選擇并移動一段圖形？點擊圖形剪輯工具條的“選擇并移動”按鈕，在剪輯頁中移動的鼠標將變為一個中空的十字，首先移動鼠標到需要選擇區域的左上角，然后按下鼠標左鍵不放，移動鼠標選擇區域的右下角，此時，有一個虛線方框隨著鼠標的移動而移動，虛線方框代表選擇的區域，當選擇好區域以后松開鼠標左鍵即完成了圖形剪輯頁的區域選擇。如果將鼠標移動到這塊剪輯區域上，鼠標將變為一只手的形狀，表明可以移動這塊選擇的區域。12如何在圖形剪輯頁中添加文字？點擊圖形剪輯工具條的“寫字

46、”按鈕，在剪輯頁中移動的鼠標將變為一個中空的十字，使用與“選擇并移動”命令相同的方法選擇寫字區域，松開鼠標左鍵將出現一個矩形的寫字區域，有一個文本光標在寫字區域內閃爍，它指定寫字的位置，操作者只需在選定的寫字區域內書寫注釋，書寫完注釋后，在剪輯頁上寫字區域以外的任何地方單擊鼠標左鍵，將完成本次寫字操作，寫字區域消失。13控制參數調節區的使用。在BL-420/BL-410軟件主界面的最右邊是一個分時復用區，在該區域內包含有控制參數調節區，點擊按鈕切換到控制參數調節區。14顯示參數調節區的使用。在BL-420/BL-410軟件主界面的最右邊是一個分時復用區，在該區域內包含有顯示參數調節區，點擊按鈕

47、切換到顯示參數調節區。15前景色、背景色的調節。前景色選擇：在前景色文字的后面是一個前景色選擇列表框，在列表框中顯示的顏色塊代表波形曲線當前正在使用的顏色，如果想改變波形曲線顏色，單擊前景色列表框右邊向下的箭頭，這時會出現一個顏色列表供選擇。背景色選擇：在背景色文字的后面是一個背景色選擇列表框，在列表框中顯示的顏色塊代表該顯示通道背景的當前使用顏色，改變背景顏色的方法與改變前景顏色的方法相同。16標尺格線色、標尺格線類型的調節。標尺格線色選擇：在標尺格線色文字的后面是一個標尺格線色選擇列表框，在列表框中顯示的顏色塊代表該顯示通道標尺格線的當前使用顏色，改變標尺格線顏色的方法與改變前景顏色的方法

48、相同。標尺格線類型選擇：在標尺格線類型文字的后面是一個標尺格線類型選擇列表框，這里有5種格線類型供選擇，可以從中選擇一種作為窗口背景中新的標尺格線類型。在選擇標尺格線的顏色和類型時應注意盡量使其不顯眼，以免影響波形曲線的觀察，因為標尺格線僅僅是波形時間和幅度的參照物，甚至可以不顯示它。17添加通用實驗標記。在工具條點擊“通用標記”按鈕箭頭的前面有一個順序標記的數字，比如1、2、3等，箭頭的后方顯示添加標記的絕對時間。18添加特殊實驗標記。從“實驗標記項”列表框選擇一個特殊標記指定的波形位置旁單擊鼠標左鍵若想添加另一個特殊實驗標記需要在 “實驗標記項”列表框中再做一次選擇。19特殊實驗標記組的編

49、輯過程中，如何添加一個實驗標記組？特殊實驗標記組的添加：點擊特殊實驗標記選擇區編輯框按鈕“L”（位于BL-420主界面的右上角、BL-410主界面的右下角）點擊“實驗標記組編輯區”中的“添加”輸入實驗標記組名點擊“修改”。20特殊實驗標記組的編輯過程中，如何修改一個實驗標記組？點擊特殊實驗標記選擇區編輯框按鈕“L”（位于BL-420主界面的右上角、BL-410主界面的右下角）選中“實驗標記組列表”的組名輸入新實驗標記組名點擊“修改”。21特殊實驗標記組組內標記的編輯。（1）添加特殊實驗標記：點擊特殊實驗標記選擇區編輯框按鈕“L”（位于BL-420主界面的右上角、BL-410主界面的右下角）點擊

50、“實驗標記列表”中的“新建”輸入文本添加特殊實驗標記點擊“確定”。（2）刪除特殊實驗標記：點擊特殊實驗標記選擇區編輯框按鈕“L”（位于BL-420主界面的右上角、BL-410主界面的右下角）選中“實驗標記列表”中的某一特殊實驗標記點擊 “刪除”點擊“確定”。（3）調整特殊實驗標記的順序：點擊特殊實驗標記選擇區編輯框按鈕“L”（位于BL-420主界面的右上角、BL-410主界面的右下角）選中“實驗標記列表”中的某一特殊實驗標記點擊 “上移”或“下移”點擊“確定”。22左右視分隔條如何使用？將光標放在左右視分隔條上當光標變成左右箭頭狀，點擊鼠標左鍵向左或右拖動分隔條。23在數據反演時，如何根據查詢

51、條件對原始采樣波形進行查找？進行數據反演時左鍵點擊“數據查找菜單”按鈕可以根據時間、通用標記或特殊標記對實驗波形進行查找。24波形橫向壓縮和橫向擴展兩個功能按鈕的使用。（1）進行數據反演時左鍵點擊“壓縮波形”按鈕實驗波形在時間軸上壓縮。（2）進行數據反演時左鍵點擊“擴展波形”按鈕實驗波形在時間軸上擴展。25如何結束一個實驗并進行原始數據的保存？點擊工具條上的“停止”按鈕對話框“確實要停止實驗嗎” 選擇“是”給文件取名點擊“保存”按鈕（默認保存在data文件夾）。 第三節 急性動物實驗的基本操作技術實驗一、蛙類實驗1演示蛙類動物的捉拿固定。取蛙或蟾蜍1只，捉拿蛙或蟾蜍時宜用左手將動物背部貼近手掌

52、固定，以中指、環指和小指壓住其左腹側和后肢，拇指和示指分別壓住右、左前肢，右手進行操作。抓取蟾蜍時，切勿擠壓兩側耳部突起的毒腺，以免毒液射入實驗者眼中，可先在蟾蜍體部包一層濕布再進行操作。2演示蛙類動物腦和脊髓的破壞。用左手示指壓住其頭部前端使頭前俯，右手持探針從枕骨大孔垂直刺入，然后向前傾斜刺入顱腔，左右攪動搗毀腦組織，將探針抽出再由枕骨大孔向后刺入脊椎椎管，搗毀脊髓。此時如果蛙或蟾蜍的四肢先強直后松軟，呼吸消失，表示腦、脊髓已被完全破壞。3連接蛙心和傳感器。剪開蛙或蟾蜍胸部皮膚，以大鑷提起胸骨劍突，用剪刀剪開胸骨和左右鎖骨并向上翻起，暴露心臟，用眼科剪小心剪開心包膜。用帶有連線的蛙心夾在心

53、室舒張期夾住心尖，并將蛙心夾的絲線連接于張力傳感器。4演示如何在生物機能實驗系統中開啟蛙心搏動實驗。雙擊Windows操作系統桌面上的“BL-420/BL-410生物機能實驗系統”圖標 “輸入信號”菜單選擇通道設定信號種類“張力”工具條 “啟動波形顯示”命令按鈕。實驗二、家兔實驗1演示家兔的捉拿。捉拿家兔時，右手抓住家兔的項背近后頸部的皮膚，輕輕提起。左手托住家兔臀部，使其體重主要落在左手掌心。2演示家兔的耳緣靜脈注射。家兔一般采用外側耳緣靜脈注射，一人操作時，將兔放入兔盒或實驗臺上，選好耳緣靜脈，拔出局部的毛，用乙醇棉球涂擦，并用食指輕彈耳殼，使血管擴張，用左手的食指和中指夾住耳根部，阻斷靜

54、脈回流，拇指和環指夾住耳尖部拉直，右手將抽好藥液的注射器(6-7號針頭)針頭刺入血管，用拇指和食指使針頭和兔耳固定，將藥液推入，如針頭在血管內，推注輕松，并可見血液被藥液沖走，如不在血管內，則推注有阻力，耳局部變白或腫脹，應立即拔出重新穿刺，如兩人合作，一人夾住家兔，右手暴露血管，壓住耳根部使血管充盈，另一人注射給藥。3演示家兔的兔臺固定。兔臺固定方法是先以四條1 cm寬的布帶做成活的圈套，前肢系在腕關節以上，后肢系在踝關節以上，前、后肢分別拉直固定于兔臺上。然后將家兔頭部用兔頭固定器或用棉線鉤住門齒，固定于兔臺頭端的鐵桿。4演示家兔的兔盒固定。兔盒固定方法是將兔放入木制或鐵皮制的兔盒固定器內

55、，僅使頭部及雙耳伸出兔盒前壁凹形口，關上兔盒頂蓋即可。5演示家兔的氣管分離。氣管位于頸部正中位置，頸部氣管全部被胸骨舌骨肌和胸骨甲狀肌所覆蓋。分開左、右胸骨舌骨肌，在正中線的聯合處，用止血鉗沿中線插入并向前后兩端擴張創口。注意止血鉗插入不可過深，以免損傷氣管和其他小血管。也可以采用兩食指沿左、右胸骨舌骨肌中縫輕輕向上下拉開，然后將左右胸骨舌骨肌向兩側拉開，即可看到氣管。一般在喉頭以下氣管分離一段氣管，在氣管下方穿一條粗線備用。6演示家兔的頸外靜脈的分離。家兔的頸外靜脈比較粗大，是頭頸部靜脈的主干。頸外靜脈分布比較表淺，在頸部皮下胸鎖乳突肌的外緣。打開頸部切口以后，用手指將一側切開的皮膚自外面向上頂起，就可以看到較粗大的呈暗紫色的頸外靜脈。用鈍頭止血鉗或玻璃分針，沿著靜脈走行方向，平行地輕輕將頸外靜脈周圍的結締組織分離。一般分離頸外靜脈的長度為34cm，分離完畢后，在靜脈下穿兩根絲線備用。7演示家兔的頸總動脈的分離。頸總動脈位于氣管兩側，胸骨舌骨肌和胸骨甲狀肌背側，左右各一條。分離覆蓋于氣管上面的胸骨舌骨肌和側面斜行的胸鎖乳突肌，深處可見呈粉紅色較粗大的血管，用手觸之有搏動感，即為頸總動脈。頸總動脈與頸部神經被結締組