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文檔簡介
ICS07.080
A21
中華人民共和國國家標準
GB/TXXXXX—201X
工業微生物菌株生長表型評價微液滴濁
度法
Evaluationofthegrowthphenotypeoftheindustrymicroorganism
strain——Microdropletturbidity
(征求意見稿)
201X-XX-XX發布201X-XX-XX實施
中華人民共和國國家質量監督檢驗檢疫總局發布
中國國家標準1化管理委員會
GB/T××××—201×
GB/T××××—201×
工業微生物菌株生長表型評價微液滴濁度法
1范圍
本標準規定了工業微生物菌株質量評價微液滴濁度法的原理、試劑材料、儀器設備、操作步驟、結
果分析。
本標準適用于工業微生物菌株生長表型評價。
2規范性引用文件
下列文件對于本文件的應用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,僅所注日期的版本適用于本文
件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改單)適用于本文件。
GB/T6682-2008分析實驗室用水規格和試驗方法
3原理
通過將微生物細胞限域在液滴中,利用微球中的面積進行生長速率計算和評價。
4試劑材料
除特殊說明外,本標準所用試劑均為分析純,水均為符合GB/T6682中規定的二級水。
4.1基礎培養基
按照GB/T15818中方法配制。或選用商品化的預制干燥培養基,嚴格按照商品說明書加水配制。
5儀器設備
5.1單細胞拉曼光譜測試系統:532nm激光,輸出強度不低于100mW,800mm長焦,600刻線光柵,100
倍物鏡,光譜分辨率不低于2cm-1,波數范圍需包含“指紋區”,即390cm-1~1800cm-1。
5.2離心機,500~4000rpm/min。
5.3顯微鏡:100~400倍,帶CCD成像模塊
5.4無菌EP管:容量1.5毫升。
5.5微量移液器及槍頭:1毫升,200微升,10微升。
5.6聚四氟乙烯管:內徑0.5mm,外徑1.59mm。
1
GB/T××××—201×
6操作步驟
6.1LB培養基的制備
配制每升培養基,應該在950mL去離子水中加入:胰蛋白胨10g、酵母提取物5g、NaCl10g,搖動容
器直至溶質溶解。用5mol/LNaOH調pH至7.0。用去離子水定容至1L。在121℃蒸汽高壓滅菌20min。
6.2微生物菌株菌液制備
從瓊脂平板挑取微生物菌株單克隆于5mLLB培養基中,在37℃、220rpm搖床中培養過夜。取1mL
的培養液3000rpm離心2min去除上清后加入PBS溶液,重復清洗3次。
6.3微生物菌液濃度選取
用LB培養基稀釋含有PBS的菌液3000倍,得到細胞懸液濃度約為6×105CFU/mL。
6.3瓊脂糖溶液制備
用分析天平稱取0.02g超低熔點瓊脂糖A5030,并向其中加入1mL已滅菌的LB培養基,加熱溶解,
配制成2%(g/v)的溶液。趁熱用0.22μm的無菌濾膜過濾,備用。
6.4微流控芯片制作
用AutoCAD設計微流控芯片通道圖形,其中分散相的寬度為40μm,連續相的寬度為60μm。制備
出分辨率為24500DPI的芯片結構掩膜。
制作芯片結構硅片,包括勻膠、前烘、曝光、后烘、顯影步驟。
PDMS微流控芯片制作,同時制作出兩個芯片,一個用于待鑒定菌株,另一個用于工業標準菌株。
6.5單細胞液滴的產生
分別將兩種菌株稀釋到6×105CFU/mL細胞與超低熔點瓊脂糖溶液混勻。
取一塊芯片,將兩個100μL的槍頭分別插在芯片的油相入口和水相入口,連續相為氟碳油,分散
相為低熔點瓊脂糖菌液,然后將聚四氟乙烯管連接出口與注射器。
將芯片放在溫控系統,范圍在30℃到37℃內,將注射器的活塞用夾子固定在注射器2mL的位置,
開始發生液滴。
取另一塊芯片重復上述步驟。
6.6單細胞液滴的培養與生長表型評價
液滴發生結束后,移除芯片上的槍頭和管子后,將兩芯片放入4℃冰箱冷凝20min后再置入盛有水
的培養皿中入37℃恒溫箱進行培養6h。
培養后的瓊脂糖微球使用倒置顯微鏡在10X物鏡成像進行成像,獲取的圖片保存為bmp格式并用軟件
進行計數。
根據兩塊芯片內微球中的面積進行生長速率的計算。獲取的數據經過對數轉換后進行統計學分析。
2
GB/T××××—201×
6.7工業菌株微生物的宏觀培養驗證
將目標液滴通過PEEK軟管收集到EP管中,加入破乳試劑對液滴進行破乳。析出底層菌液加入LB培養
基中放入搖床培養12h,稀釋到適宜濃度后進行涂布培養。
7結果分析
篩選菌株與參考菌株的生長速率差異按式(1)計算:
………………….(1)
式中:
D——標準
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