實驗動物的給藥方法實驗動物的給藥方法在動物實驗中，為了觀察藥物對機體功能、代謝及形態(tài)引起的變化，常需要將藥物注入動物體內(nèi)。給藥的途徑和方法多種多樣，可根據(jù)實驗?zāi)康摹嶒瀯游锓N類和藥物劑型、劑量等情況確定。（一）注射給藥法1.皮下注射注射時用左手拇指及食指輕輕捏起皮膚，右手持注射器將針頭刺入，固定后即可進行注射。①小鼠在背部或前肢腋下，大鼠在背部或側(cè)下腹部；

②豚鼠在后大腿內(nèi)側(cè)、背部等脂肪少的部位；

③兔在背部或耳根部注射；

④蛙可在脊背部淋巴囊注射；

⑤狗多在大腿外側(cè)注射，拔針時，輕按針孔片刻，防藥液逸出。2.皮內(nèi)注射此法用于觀察皮膚血管的通透性變化或觀察皮內(nèi)反應(yīng)。如將一定量的放射性同位素溶液、顏料或致炎物質(zhì)、藥物等注入皮內(nèi)，觀察其消失速度和局部血液循環(huán)變化，作為皮膚血管通透性觀察指標之一。方法是：將動物注射部位的毛剪去，消毒后，用皮試針頭緊貼皮膚皮層刺入皮內(nèi)，然后使針頭向上挑起并再稍刺入，即可注射藥液。注射后可見皮膚表面鼓起一白色小皮丘。3.肌肉注射當(dāng)給動物注射不溶于水而混懸于油或其他溶劑中的藥物時，常采用肌肉注射。肌肉注射一般選用肌肉發(fā)達、無大血管經(jīng)過的部位，多選臀部。注射時針頭要垂直快速刺入肌肉，如無回血現(xiàn)象即可注射。給大、小鼠作肌肉注射時，選大腿外側(cè)肌肉進行注射。4.腹腔注射先將動物固定，腹部用酒精棉球擦試消毒，然后在左或右側(cè)腹部將針頭刺入皮下，沿皮下向前推進約0.5厘米，再使針頭與皮膚呈45度角方向穿過腹肌刺入腹腔，此時有落空感，回抽無腸液、尿液后，緩緩?fù)迫胨幰骸４朔ù笮∈笥玫妮^多。5.靜脈注射為了鑒定藥物或毒物經(jīng)皮膚的吸收作用、局部作用、致敏作用和光感作用等，均需采用經(jīng)皮膚給藥方法。如兔和豚鼠常采用背部一定面積的皮膚脫毛后，將一定的藥液涂在皮膚上，藥液經(jīng)皮膚吸收。3.脊髓腔內(nèi)給藥：此法主要用于錐管麻醉或抽取腦脊液。4.腦內(nèi)給藥：此法常用于微生物學(xué)動物實驗，將病原體等接種于被檢動物腦內(nèi)，然后觀察接種后的各種變化。5.直腸內(nèi)給藥：此種方法常用于動物麻醉。兔直腸內(nèi)給藥時，常采用灌腸的膠皮管或用14號導(dǎo)尿管代替。6.關(guān)節(jié)腔內(nèi)給藥：此法常用于關(guān)節(jié)炎的動物模型復(fù)制。大鼠給藥方法一、大鼠灌胃大鼠灌胃是最常見的給藥方法之一。灌胃所用的針頭可以從市場上購買，操作方法和小鼠灌胃大同小異，只是由于大鼠體積較大，抓大鼠的手法和小鼠有所不同。大鼠灌胃是在清醒狀態(tài)下進行的，不需要麻醉。大鼠的灌胃針長約6～8cm，直徑約1.2mm。大鼠灌胃時，右手持灌胃注射器，左手拇指和食中二指相對，抓住大鼠頸部皮膚，使大鼠的頭部和頸部及軀干呈一直線，不需要固定大鼠的尾巴，就可以實施灌胃操作了，其余的操作均和小鼠一樣。大鼠一般灌胃量為1ml/100g體重，因此一般大鼠灌入2ml是可以的。大鼠的灌胃給藥體積一般為5～10ml/kg。但是藥物的濃度是需要自己按照動物實驗方法學(xué)的方法進行換算：200g大鼠對應(yīng)70kg人的折算系數(shù)為0.018。二、大鼠腹腔注射腹腔注射是常見的給藥方式，尤其是在麻醉時。常見的麻醉方法均是麻醉藥物腹腔注射。大鼠腹腔注射的方法和小鼠基本相同。1.大鼠腹腔注射可以用5ml的注射器，配合5.5～7號針頭。2.腹腔注射時右手持注射器，左手的小指和無名指抓住大鼠的尾巴，另外三個手指抓住大鼠的頸部，使大鼠的頭部向下。這樣腹腔中的器官就會自然倒向胸部，防止注射器刺入時損傷大腸、小腸等器官。進針的動作要輕柔，防止刺傷腹部器官。3.尤其是對于體重較小的大鼠，腹腔注射時針頭可以在腹部皮下穿行一小段距離，最好是從腹部一側(cè)進針，穿過腹中線后在腹部的另一側(cè)進入腹腔，注射完藥物后，緩緩拔出針頭，并輕微旋轉(zhuǎn)針頭，防止漏液。4.大鼠腹腔注射的給藥容積一般為5～10ml/kg。三、大鼠尾靜脈注射這也是常見的操作，稍微有點難度，沒有指導(dǎo)的話，一開始可能會感覺有點手足無措。但是可以肯定的說，只要掌握了方法，大鼠的尾靜脈注射還是很容易的。總的來說，大小鼠的尾靜脈注射難度相當(dāng)，熟練后，大鼠應(yīng)該比小鼠注射更容易，因為大鼠的尾巴較粗，而且血管也較粗，進針的手感比較好找。但是大鼠年齡增大后，尾部鱗片也較厚，此時尾靜脈注射難度會加大，進針點宜選擇兩個鱗片的間隙，以利于針尖順利刺入。操作步驟：1.首先要固定大鼠，最簡單的固定方法就是把大鼠麻醉，然后大鼠躺在那里不動，就可以順利操作了。但是我們往往需要多次給藥，就是單次給藥的話，每只都麻醉的話，也很麻煩，而且還要考慮麻醉對實驗結(jié)果和動物的影響，因此，有必要找另外的方法固定了。再有的固定方法就和小鼠類似，做一個圓筒，最好是金屬做的，（可以在當(dāng)?shù)氐蔫F匠鋪，或者買白鐵鋪里面定做）首先是金屬比較結(jié)實，而且可以用來固定在鐵架臺上，方便操作。圓筒的一段有個蓋子可以拿下來，蓋子中間有個小孔，可以讓大鼠的尾巴伸出來（中間的小孔可以用膠布纏一下，防止銳利的邊緣割傷大鼠尾巴）。另外一段可以用金屬網(wǎng)的結(jié)構(gòu)，網(wǎng)的形狀可以做成子彈頭的頭端形狀。網(wǎng)狀結(jié)構(gòu)可以讓光線透近來，方便大鼠鉆進圓筒里面。圓筒的長度約15～20cm，直徑約5～8cm，可以做個系列長度和直徑的圓筒，適合不同大小的大鼠。操作的時候，可以把圓筒固定在鐵架臺上面，有鐵絲網(wǎng)的一面稍微向上，拔下另外一頭的蓋子，抓住大鼠的尾巴，懸空大鼠，讓大鼠的頭部靠近圓筒，稍微引導(dǎo)一下，大鼠就會鉆進圓筒，將大鼠的尾巴穿過蓋子中間的小孔，蓋上蓋子，向外拉直大鼠尾巴，就可以進行下一步操作了。也有直接利用大鼠籠蓋的鐵絲網(wǎng)固定大鼠，向上面小鼠固定的方法固定大鼠，那是高手所為，總共只需要一次到兩次的靜脈注射時可以試用，不推薦使用。2.固定好大鼠后就是注射了，一般用一次性的5ml的注射器，去除針頭，接上5.5號的頭皮針，用頭皮針穿刺，個人感覺比較方便，而且便于固定針頭。3.注射前首先要讓大鼠的血管充盈。可以采用75%的酒精棉球擦拭的方法或者采用溫水浸泡的方法，（一般水浴溫度45度左右），大概2分鐘就可以讓尾部左右二側(cè)靜脈充分擴張，用電吹風(fēng)的熱風(fēng)吹大鼠尾部，這種使靜脈擴張的方法不但快而且操作方便，但要控制好吹的方式，不要弄傷動物。若大鼠的血管很不清楚，推薦采用溫水浸泡的方法，水溫以不燙手為宜。溫水浸泡2～3分鐘后，取出大鼠尾巴，用干棉球擦拭。等一會兒，待血管充盈后，酒精棉球擦拭后就可以進針了。若血管還不充盈，可以反復(fù)用溫水浸泡，切不可冒險注射，除非你手法很熟練，另當(dāng)別論。4.大鼠尾部共有四條血管，一般認為左右的兩條靜脈比較容易注射，多采用這兩條靜脈進針。一般要求進針部位靠近大鼠的尾端，這樣若注射失敗的話，還可以再向上選擇進針點。但是進針部位也不可以太靠下，因為越往下，靜脈越細，操作越難，一般以大鼠尾巴下三分之一的位置比較好。5.最關(guān)鍵的就是進針了。進針時操作者左手食指和拇指固定住大鼠的尾巴，讓大鼠的尾巴在經(jīng)過拇指后向下彎曲，進針點靠近拇指指甲。針頭和血管呈約30°角，針尖斜面朝上，輕輕挑刺入皮膚后針頭立即和血管平行，一般情況下一次就可以進入血管，可以將針頭刺入血管一大半，輕輕回抽針栓，看見有明顯的回血，就可以推注藥液了，正常情況下，推注的過程應(yīng)該沒有明顯阻力，血管也不會鼓起。推液時動作宜輕柔，若發(fā)現(xiàn)血管鼓起，那是針頭沒有刺入血管，需立即拔出針頭，重新注射。（正常情況下，均可以看見回血，若沒有回血，9成是沒有進入血管，不要推藥，拔出針頭，重新穿刺，以防推注藥液導(dǎo)致大鼠尾巴皮下水腫，加大穿刺的難度，若是帶有顏色的液體，如伊文斯蘭，就更要注意）6.注射結(jié)束后，輕輕拔出針頭，可以用干燥的棉球壓一下進針點，防止液體回漏。四、大鼠舌靜脈注射大鼠的舌靜脈給藥比較少見，因為他需要在麻醉狀態(tài)下方可以操作。不麻醉的情況下也不是不可以，但是若不麻醉的話，既不符合動物福利，也很容易失敗，而且操作人員也容易受傷。一般在做垂體后葉素致大鼠心肌缺血的實驗中，垂體后葉素的靜脈注射采用舌靜脈注射。1.舌靜脈注射一般采用1ml注射器，配4號針頭。

2.大鼠麻醉后，仰臥位固定在鼠板上，牙齒也固定好。右手持眼科鑷，輕輕拉出大鼠舌頭，左手拇指和食指輕輕捏住舌尖，可見大鼠舌頭兩側(cè)均有一條很清楚的靜脈，一般右側(cè)的比較順手（我是右撇子），左手稍微繃緊大鼠舌頭，不要繃的太緊，這樣靜脈會看的不清楚，以能拉直大鼠舌頭，且能清楚看見血管為宜。

3.右手持注射器，針尖斜面朝上，和舌頭血管呈15°角，挑刺入血管。（舌靜脈非常淺，針尖挑刺舌面皮膚后就進入血管了），輕輕推注藥液，若發(fā)現(xiàn)舌頭有鼓起，則是注射失敗。這樣注射點很容易出很多學(xué)，形成血腫，這側(cè)靜脈想再次注射就很困難了，那么最好就選用另外一側(cè)靜脈了。

4.舌靜脈血流很豐富，拔針時一定要用干棉球壓迫注射點，幫助止血。

5.正常的舌靜脈注射不影響大鼠的進食。五、大鼠經(jīng)皮膚給藥首先需要脫毛可以配制8%的硫化鈉溶液，也可以自配脫毛劑，配方：硫化鈉：肥皂粉：淀粉為3：1：7，加水混合成糊狀軟膏。用棉簽將脫毛劑涂在要脫毛的部位，觀察看見區(qū)域內(nèi)鼠毛發(fā)粘用干凈棉簽沾潔凈的水將脫毛部位清洗干凈，大鼠一般用腹部皮膚，小鼠可用背部皮膚。六、大鼠鞘內(nèi)給藥鞘內(nèi)給藥有兩種方式：一是急性給藥，二是長期慢性給藥。慢性給藥，具體的說應(yīng)該是在暴露出寰枕膜后將PE10管插入蛛網(wǎng)膜下隙，至有清亮腦脊液反流后可確定位置正確，然后將PE10管插入7.5cm達腰膨大水平，固定并縫合即可。注射反意寡核苷酸，所以直接在L4～5椎間隙進針就可以對于長期給藥宜選慢性套管給藥，選做好插入深度標記的PE-10導(dǎo)管，根據(jù)動物大小和所需埋置的脊髓節(jié)段，決定好插入深度，一般270～320g的大白鼠腰骶部約7.5cm，胸段約5～5.5cm。給藥：將4號注射針頭鋸斷，并磨尖，插在PE-10導(dǎo)管上，導(dǎo)管另一端接在另一接又注射器的4號針頭上，給藥時只需將鋼管另一端與動物身上埋植好的PE-10導(dǎo)管相接即可。七、大鼠陰道給藥大鼠陰道給藥方法類似于小鼠，而且大鼠的生殖道比小鼠要長一些，會比小鼠操作相對容易一些。小鼠陰道內(nèi)感染，是往小鼠陰道內(nèi)注射感染菌液，開始感染時采用的是用小兒科的頭皮針改做的軟管向小鼠生殖道內(nèi)注射，但因為小鼠生殖道很淺，而且軟管本身占有小鼠生殖道的一部分體積，導(dǎo)致主入的菌液易漏，后來嘗試用50ul的加樣器每次取20ul，采取多次注射的辦法。做此類實驗主要是注意感染的藥物或液體不要漏出來，可以采取多次注射的辦法。八、大鼠鼻腔給藥1.有滴鼻和噴霧兩種常見方式噴霧其實就是霧化吸入。

滴鼻給藥沒有辦法達到霧化吸入的效果。

霧化吸入需要有霧化設(shè)備，一般醫(yī)院的都有，但是醫(yī)院的如果借不出來，自己家里的加濕器也可以湊合。

霧化給藥的時候，要把大鼠放在一個相對比較密閉的的容器中（當(dāng)然要有透氣孔），讓大鼠盡可能多地接觸藥物，但是好象沒有專門的這種容器，一般都是自制的，材料最好是有機玻璃。如果需要一只一只給藥的話，